Автор работы: Пользователь скрыл имя, 10 Октября 2012 в 21:09, курсовая работа
В 1953 р. Джеймс Уотсон і Френсис Лемент постулювали структуру подвійної спіралі ДНК. Їхня гіпотеза, правильність якої була підтверджена надалі в найрізноманітніших численних експериментах різного роду, представляла собою результат спільних зусиль генетичної теорії, що висунула концепцію кодування генетичної інформації за допомогою генів, фізики, яка дозволила визначити молекулярну структуру ДНК методом рентгеноструктурного аналізу, і біохімії, яка дозволила встановити хімічний склад ДНК і принцип спарювання комплементарних основ
ВСТУП……………………………………………………………………………………..4
РОЗДІЛ 1. Генетична інформація
1.1.ДНК і РНК, їх функції………………………………………………...5-6
1.2.Генетичний код………………………………………………………...6-7
1.3. Розшифрування коду……………………………………………………7
Висновок……………………………………………………………………...7
РОЗДІЛ 2. Способи передачі генетичної інформації
2.1. Реплікація ДНК напівконсервним способом………………………..8-9
2.2. Реплікація кільцевої ДНК у двох напрямках………………………9-11
2.3. Багатоточковість початку реплікації в еукаріотичних ДНК…….11-12
2.4. Реплікація ДНК по механізму " кільця, що котиться "…………..12-13
2.5. Вміст в бактеріальних екстрактах ДНК-полімерази……………..13-14
2.6. Дія ДНК-полімерази відбувається тільки за участю попередньої ДНК…………………..14-15
2.7. Наявність багатьох ферментів і білкових факторів для реплікації ДНК…
2.8. Наявність трьох ДНК-полімераз у клітинах E.coli……………....15-16
2.9. Одночасна реплікація обох ланцюгів ДНК створює проблеми…….16
2.10. Відкриття фрагментів Оказакі…………………………………...16-17
2.11. Необхідність РНК-запалу для синтезу фрагментів Оказакі……….17
2.12. Фрагменти Оказакі з'єднуються один з одним за допомогою ДНК-легази………………………………………………………………………………18
2.13. Необхідність фізичного поділу ланцюгів батьківської двухланцюгової ДНК для реплікації……………………18-20
2.14. Протікання реплікації в еукаріотичних клітинах…………………..20
2.15. Транскрибування генів з утворенням РНК…………………………20
2.16. Синтез матричної РНК при допомозі ДНК-залежної РНК- полімерази……………………..…21-22
2.17. Проходження подальшого перетворення транскриптів РНК…….22
2.18. Слугування гетерогенних ядерних РНК попередниками еукаріотичних матричних РНК……………………22-23
2.19. Зчитування у РНК-утримуючих вірусів ДНК за допомогою зворотної транскриптази………………...…………23-24
Висновок……………………………………………………………………24
РОЗДІЛ 3. ГЕНОТОКСИЧНІСТЬ НАНОМАТЕРІАЛІВ
3.1. Генотоксичні властивості наноматеріалів…………………………...25
3.2. Дослідження генотоксичності наноматеріалів…………………...25-27
Висновок…………………………………………………………………….27
Список використаної літератури………………………………………….28
Додаток А
Додаток Б
3.2. Дослідження генотоксичності наноматеріалів
Генотоксичні властивості НМ вивчені в декількох дослідженнях in vitro. ДНК-ушкодження виявлені методом Comet при оцінці дії наночастинок кобальт-хромового сплаву на культивовані фібропласти людини; ультратонких (менш 100 нм у діаметрі) TiО2-наночастинок на лімфобласти людини; покритих церієм TiО2-наночастинок, активованих видимим світлом, на клітини гепатоми людини; TiО2-наночастинок розміром 10-20 нм без фотоактивації на бронхіальні эпітелноцити людини. Наночастинки реальгару підвищували ДНК-фрагментацію й апоптоз у клітинах U937. Наночастинки читосану (65 нм) у концентраціях 25-100 мкг/л індукували ДНК-фрагментацію й апоптоз у клітках карциноми шлунку людину.
У той же час, генератори рентгенівських променів нового типу, у яких використовуються вуглецеві нанотрубки, виявилися однаковими по ефективності індукції ДНК-ушкоджень (подвійних розмірів) у клітинах лімфоми мишей in vitro, у порівнянні з генераторами терміонного типу, що застосовувалися раніше. Люміносцентні кремнієві наночастинки не викликали модифікацію основ ДНК, розривів ДНК, підвищену репараційну активність клітин в культурі при концентрації менш 100 мкг/л.
Підвищення рівня хромосомних аберацій показано в дослідах за оцінкою дії наночасток оксиду цинку (середній розмір - 100 нм). Цей інгредієнт широко використовується в дерматологічних препаратах і засобах УФ-захисту. Препарат індукував хромосомні аберації при обробці культури клітин китайського хом'ячка CHO в трьох варіантах: в темряві, в умовах попередньої обробки УФ-світлом з наступною дією оксиду цинку і при одночасній дії оксиду цинку і УФ-опроміненням. У двох останніх варіантах досліду значущий ефект виявлений при нижчих концентраціях оксиду цинку. Негативний ефект отриманий у досліді по аналізу хромосомної аберації в культурі клітин китайського хом'ячка CHO при дії ультратонких частинок TiO2.
Утворення мікроядер відмічено в дослідженнях in vitro при дії наночастинок діоксиду титану: покритих церієм TiO2 - наночастинок, що активуються видимим світлом на клітини гепатоми людини; TiO2 -наночастинок розміром 10-20 нм на бронхіальних епітеліопітах людини без фотоактивації; ультратонких часток TiO2 (< 100 нм в діаметрі) на лімфобласти людини в культурі.
Анеуплоїдія визначена при вивченні дії наночастинок кобальт-хромового сплаву на клітини культури фібробластів людини.
Ультратонкі частинки діоксиду титану виклили 2,5-кратне підвищення частоти HPRT -мутацій при дії на культуру лімфобластів людини.
Нині практично відсутні дані за оцінкою генотоксичної дії НМ in vivo. У одному з дослідів вуглецеві нанотрубки при інтратрахеальній інстиляції викликали ушкодження мітохондріальної ДНК в клітинах аорти трансгенних Арое (-/ -) мишей на 7, 28 і 60 день экпозиції. Вважають, що з цим пов'язане виявлене розширення зони атеросклеротичних бляшок в аорті. Слід звернути увага на прояв ефекту в системі кровообігу при інтратрахеальному введенні препарату, що мабуть, пов'язано з транслокацією цих часток і прямою дією, що викликає серцево-судинну дисфункцію.
На думку ряду авторів, генотоксична активність НМ визначається їх здатністю індукувати активні радикали кисню і азоту, що пошкоджують ДНК, а також високою проникністю і прямою дією на внутрішньоклітинні структури, в тому числі на пітоскелет і хроматин.
Порівняння генотоксичного ефекту нано- і мікрочастинок одних і тих же з'єднань показує, що перші мають більшу активністю.
Ще однією важливою особливістю НМ, яку слід враховувати при оцінці генотоксичної дії, являється їх проникнення і, в ряду випадків, акумуляція в різні органи: легені, судини, лімфатичну тканину, кістковой мозок, печінку, нирки.
Аналіз представлених досліджень показує, що генотоксична активність НМ майже невивчена. Приведені дані отримані на обмеженій кількості НМ і, в основному, в дослідах in vitro. З іншого боку, навіть це невелике число робіт вказує на здатність НМ індукувати ДНК-ушкодження, хромосомні аберації, мікроядра, анеуплодію. Нещодавно виявлені наслідки генотоксичної дії НМ : ультратонкі частинки діоксиду титану (< 100 на в діаметрі), викликали фіброз і рак легені у щурів.
Висновок
Таким чином, є підстави побоюватися генотоксичної дії НМ на організм людини і важких наслідків цього, в першу чергу канцерогенного ефекту. Можна припускати, НМ будуть активніші при дії на генетичний апарат клітин в порівнянні з мікрочастинками. Отже, насущною необхідністю є створення системи оцінки генетичної безпеки НМ, основою якої може бути загальноприйнятий підхід до оцінки мутагенних властивостей хімічних з'єднань, найбільш детальніше розроблений для лікарських препаратів. Система має бути доповнена тестами in vivo для аналізу органної специфічності генотоксичної дії НМ. Нині важливо почати комплексну оцінку генетичної безпеці НМ різного типу.
Список використаної літератури
Додаток А
Амінокислота |
Кодон |
Загальна к-ть кодонів |
Аланін |
GCX |
4 |
Аргінін |
CGX, AGA, AGG |
6 |
Аспарагін |
AAU, ACC |
2 |
Аспаранінова кислота |
GAU, GAC |
2 |
Цістеїн |
UGU, UGC |
2 |
Глутамінова кислота |
GAA, GAG |
2 |
Глутамін |
CAA, CAG |
2 |
Гліцин |
GGX |
4 |
Гістидін |
CAU, CAG |
2 |
Ізолейцин |
AUU, AUC,AUA |
3 |
Лейцин |
UUA, UUG, CUX |
6 |
Лізин |
AAA, AUG |
2 |
Метіонін (AUG являється також кодоном ініціації |
AUG |
1 |
Фенілаланін |
UUU, UUC |
2 |
Пролін |
CCX |
4 |
Серін |
UCX, AGU, AGC |
6 |
Треонін |
ACX |
4 |
Тріптофан |
UGG |
1 |
Тірозін |
UAU, UAC |
2 |
Валін (GUG інколи являється кодоном ініціації) |
GUX |
4 |
Термінація
|
UAA (ochre) |
3
|
UAG (amber) | ||
UGA | ||
Загальна кількість |
64 |
Таблиця А.1. Генетичний код
5'-OH-кінцева основа |
Основа в середній частині |
3'-OH-кінцева основа | |||
U(T) |
C |
A |
G | ||
U(T) |
Phe |
Ser |
Tyr |
Сys |
U(T) |
Phe |
Ser |
Tyr |
Cys |
C | |
Leu |
Ser |
Термінуючій кодон |
Термінуючій кодон |
A | |
Leu |
Ser |
Термінуючій кодон |
Trp |
G | |
C |
Leu |
Pro |
His |
Arg |
U(T) |
Leu |
Pro |
His |
Arg |
C | |
Leu |
Pro |
Gln |
Arg |
A | |
Leu |
Pro |
Gln |
Arg |
G | |
A |
Ile |
Thr |
Asn |
Ser |
U(T) |
Ile |
Thr |
Asn |
Ser |
C | |
Ile |
Thr |
Lys |
Arg |
A | |
Met(*) |
Thr |
Lys |
Arg |
G | |
G |
Val |
Ala |
Asp |
Gly |
U(T) |
Val |
Ala |
Asp |
Gly |
C | |
Val |
Ala |
Glu |
Gly |
A | |
Val(*) |
Ala |
Glu |
Gly |
G |
Таблиця А.2. Шістдесят чотири кодона генетичного коду
(*) Кодони ініціації
Додаток Б