Алеутская болезнь норок

В США в результате испытаний ИФА (Gorham J.R. et al., 1981), как и в Канаде, не удалось выявить норок с непрогрессирующей болезнью, что позволило заключить о преимуществах РИЭОФ перед ИФА.

В России ИФА внедрялась (Мирошниченко С.В. с соавт., 1982; Таранин А.В. с соавт., 1996, 2000) в модифицированном виде на нескольких фермах, но общепризнанных преимуществ перед РИОЭФ также не было показано (Уласов В.И., Третьяков А.Д., 1998; и др.). Кроме того, необходимо учитывать, что методика исполнения ИФА более сложная и вряд ли доступна для освоения в каждом звероводческом хозяйстве, как это сейчас практикуется с РИЭОФ. Комиссионные испытания в России в какой-то степени подтвердили выявленные канадскими и американскими исследователями недостатки ИФА, что побудило рекомендовать её в качестве дополнительного (а не альтернативного) к РИЭОФ метода.

 

Табл. 1-3. Сравнительное изучение диагностической ценности РИЭОФ и ИФА (по Wright J.R., Wilkie B.N., 1982)

 

 

 

 

 

Были также разработаны реакция непрямого встречного иммуноэлектроэлектрофореза и количественного радиоиммунного теста, но подобно ИФА ни один из этих методов не получил доказательств успешного использования в оздоровительной и профилактической программе (Alexandersen S., 1990). Та же участь постигла и предложенный Alexandersen S. and Hau (1985) реакцию ракетного линейного электрофореза и её модификации.

За рубежом и в РФ испытана также полимеразная цепная реакция (ПЦР) как чувствительный метод обнаружения вируса АБ в организме зараженных животных, во внешней среде и в кормах, но ее дороговизна и трудоемкость сдерживают применение в качестве массового теста непосредственно в условиях зверохозяйств. Bloom M.E. с соавторами (1996), сравнив чувствительность РИЭОФ и ПЦР в выявлении инфицированных норок, установили, что РИЭОФ была более эффективной (97% против 62%). Еще ранее Yackson M.K. с соавт.(1992) обнаружили, что на 10-й день после экспериментального заражения ПЦР выявила лишь 80% инфицированных норок, тогда как РИЭОФ – 100%, хотя на 3-й и 7-й дни ПЦР уже была положительной соответственно у 60 и 20% подопытных норок в то время, когда РИЭОФ - отрицательной. Возможно, недостаточная чувствительность ПЦР могла быть обусловлена низкой концентрацией вируса. На экспериментально зараженных норках установлено (Jackson M.K. et al., 1998), что вначале вирусная ДНК присутствует в лейкоцитах в больших количествах, но после появления антител резко уменьшается и иногда даже не определяется, т.е. здесь мы можем иметь дело с выпадением положительной ПЦР. Тем не менее, несмотря на отмеченные недостатки, ПЦР может оказаться чрезвычайно полезной для идентификации полевого вируса, индикации вируса в кормовых средствах, а также в окружающей среде для оценки качества дезинфекционных работ.

Обухов И.Л. и Макова В.М. (2002), протестировав более 1000 образцов крови и фекалий методом ПЦР под контролем РИЭОФ и ИФА, получили полное совпадение результатов. Одновременно были исследованы при помощи ПЦР образцы смывов со зверомест, кормокухни, поилок и кормов, что позволило обнаружить вирус АБ в указанном материале. Сделано заключение, что посредством ПЦР можно выявлять и устранять источник заражения норок вирусом АБ. Аналогичного взгляда придерживаются и Рыжова Т.А. с соавт. (2002), показавшие возможность индикации вируса в почве на территории звероводческого хозяйства. К сожалению, исследования в данном направлении немногочисленны.

До внедрения РИЭОФ во всех странах, занимающихся норководством, широко использовалась в качестве диагностического метода неспецифическая биохимическая реакция - йодная проба, йодно-агглютинационный тест (ЙАТ). Метод основан на выявлении характерных изменений в крови, заключающихся в том, что при АБ у норок резко повышается уровень гаммаглобулина (IgG) – с 15 до 70% от общего белка сыворотки крови (норма до 14,9%). Но и это еще не предел. Кочлашвили Т.И. (1984) обнаружила у 15% норок чрезвычайно высокое содержание IgG (до 70 мг/мл), приближающееся к общей концентрации сывороточных белков в крови норок в норме.

При добавлении к сыворотке крови, содержащей более 20% гаммаглобулина, йодный реактив его коагулирует (появляются визуально обнаруживаемые хлопья) и таким образом выявляет норок с прогрессирующей (острой) АБ, хотя и пропускает с хронической и латентной, когда уровень гаммаглобулина не превышает 15-20%. Отсюда видно, что на основе диагностики посредством ЙАТ невозможно выявить и изолировать всех инфицированных особей, а значит и оздоровить фермы. Однако благодаря повсеместному применению ЙАТ на протяжении 20 лет и более в хозяйствах стала преобладать хроническая АБ, при которой норки давали, хотя и невысокие (обычно 3,5-4,5 щенка на самку), но экономически неубыточные результаты воспроизводства и сохранности (если же оставлять на племя норок с положительным ЙАТ, то выход щенков составит примерно 1,5-2,5 щенка). По этой причине сложилось устойчивое, но как теперь стало ясно, ошибочное мнение, что АБ является хронической инфекцией. Об этом можно было узнать практически из всех прежних публикаций. Аналогично считали, что ЙАТ, являясь неспецифическим, обнаруживает у норок, например, дистрофию печени, туберкулез и абсцессы. Но и это мнение не было экспериментально доказано, так как в годы применения ЙАТ не имелось надежных методов исключения АБ у норок, страдавших указанными и другими болезнями. И действительно, до сих пор неизвестны болезни норок, кроме АБ, при которых уровень гаммаглобулина поднимался бы выше 20%.

Делались попытки внедрить дополнительно к ЙАТ или взамен его тимоловую пробу и электрофорез белков крови (Берестов В.А., Самсонов В.А, 1969), глютаральдегидный тест и некоторые другие методы, но поскольку в широкой практике они не прижились, то описывать их не имеет смысла.

Возобновившийся в последнее время интерес к ЙАТ возник потому, что в ряде хозяйств вследствие заражения почти всего стада оказалось невозможным набрать на племя серонегативных по РИЭОФ норок. Из-за недостатка финансовых средств закупка здоровых норок для замены больных в таких хозяйствах также стала неосуществимой. В данной ситуации сформировать основное стадо можно было бы на основе определения в РИЭОФ титров антител у каждой норки, оставляя на племя лишь особей с самыми низкими титрами, т.е. с непрогрессирующим течением АБ. Тогда сохранялась бы возможность получить более или менее удовлетворительные результаты щенения и избежать большого падежа. Но данная работа трудоемка, требует навыка, наличия дополнительного инструментария и увеличения расхода диагностикума в 8-10 раз. И, самое главное, поскольку при таком подходе не достигается перспективная цель – ликвидация АБ, то имеет смысл вместо полуколичественной РИЭОФ применить в этой ситуации простой и дешевый ЙАТ. Учитывая, что ЙАТ давно исключён из практики, а методика его постановки опубликована в старых, зачастую недоступных для практических работников книгах и журналах, возникла необходимость хотя бы краткого ее описания.

Кровь для ЙАТ берут так же, как и для РИЭОФ, но не допускают для исследования гемолизированную, хилезную или с примесью эритроцитов сыворотку. Стекло перед нанесением капли сыворотки тщательно моют с мылом или стиральным порошком, ополаскивают водой и обезжиривают спирт-эфиром. Йодный реактив готовят за сутки до начала работы, сохраняют в холодильнике в темной посуде не более 10 дней. Для его приготовления берут 30 мл дистиллированной воды, в которой растворяют 4 г йодистого калия, а затем 2 г кристаллического йода. На каплю сыворотки глазной пипеткой наносят каплю йодного реактива и стеклянной палочкой размешивают. Положительная реакция проявляется в виде темно-коричневых хлопьев, а при отрицательном результате смесь остается прозрачной, без хлопьев и осадков, в течение 3 минут. Необходимо помнить, что ЙАТ иногда дает немало ложных положительных результатов (об отрицательных упоминалось ранее), обусловленных некачественностью сыворотки или реактива – гемолизом, чрезмерным подогреванием зимой, контактом с крепкими дезрастворами, недостаточно чистыми стеклами, неправильно приготовленным или долго хранившимся реактивом. Для исключения этих ошибок целесообразно приготовить в местных условиях диагностическую контрольную положительную и отрицательную сыворотки от норок на основе прежних показаний РИЭОФ или ЙАТ. Сыворотку получают общеизвестным методом и сохраняют лучше при минусовой температуре. Контрольные сыворотки используют для каждого стекла, расчерченного обычно на 100 квадратов (ЙАТ с ней ставят 1 раз на 100 проб испытуемых сывороток). Для лучшей видимости стекло снизу подсвечивают, не допуская его нагревания.

 

Лечение:

 

Специфическая терапия, как и профилактика, не разработана. Стратегия лечения направлена на продление жизни больным норкам до созревания волосяного покрова и заключается в подавлении возбудителей секундарных инфекций (антибактериальная терапия) и неадекватно высокой продукции антител (иммунодепрессанты), проведении симптоматического лечения (витамины, стимуляторы, гидролизаты, растворы электролитов, глюкоза и т.д.) и диетического кормления. Терапия осуществляется как индивидуальная, так и групповая – с кормом или в виде инъекций. Подбор средств может быть самым разнообразным.

Широко используют смеси антибиотиков, сульфаниламидов и фуранов с кормом. Многие хозяйства добавляют в корм витаминные концентраты, пробиотики (молочно-кислые бактерии), покупая их или готовя в хозяйстве.

 

Профилактика и меры борьбы:

 

В благополучных хозяйствах исследуют только что павших, вынужденно убитых и подозреваемых в заражении норок, а также предназначенных для племпродажи (октябрь). Кроме того, в таких хозяйствах ежегодно в мае-июне исследуют в РИЭОФ пробы крови самок без приплода (подозреваемые в заболевании).

 

При установлении диагноза зверохозяйство объявляют неблагополучным и вводят ограничения.

 

С целью выявления серо-позитивных норок исследуют пробы крови всех племенных норок 3 раза в год: осенью (сентябрь и октябрь), когда комплектуется основное стадо; зимой (январь-февраль) и в весенне-летный период (март-апрель) после гона и в мае-июне — до отъема щенков. Осенью серопозитивных норок изолируют и убивают после созревания волосяного покрова. В январе-феврале, положительно реагирующих убивают. Серопозитивных норок, выявленных в третьем туре изолируют (лактирующих вместе с приплодом содержат до созревания волосяного покрова, обеспечив предотвращение дальнейшего распространение возбудителя за пределы эпизоотического очага.

 

В мае-июне (после щенения) исследуют пропустовавшихся (с прохолостами) и неблагополучно щенившихся самок, а также имевших большой отход щенков; исследованию подлежат и самцы, не участвовавшие в гоне. В декабре проводят выборочное исследование проб крови норок тех бригад, в которых осенью уровень положительно реагирующих был выше, чем в среднем по ферме. В случае обнаружения серопозитивных норок, назначают внеочередное исследование в шеде, где находились реагирующие животные. Серопозитивных животных изолируют и убивают после созревания волосяного покрова.

 

Текущую дезинфекцию проводят 4%-ным горячим раствором формалина или 2%-ным раствором глютарового альдегида. Спецодежду и предметы ухода санируют в пароформалиновой камере или в автоклаве не реже 1 го раза в неделю и после работ, связанных с массовой ловлей норок.

 

Хозяйство считают благополучным и снимают ограничения после получения трехкратного отрицательного результата плановых исследований сыворотки крови основного и ремонтного поголовья норок по РИЭОФ.

 

Заключение:

 

При появлении первых клинических признаков, постарайтесь как можно скорее осуществить вызов ветеринарного врача на дом или на ферму. Помните, что бывают ситуации, когда  речь идёт уже не о днях, а о часах и даже минутах.

 

Шанс на спасение животного есть всегда, главное - вовремя его использовать! Жизнь и здоровье вашего питомца зависит не только от профессионализма ветеринара, но и от того, как быстро вы обратитесь к врачу.

 

Список используемой литературы:

-Акулова В.П. и др. -Биология и патология клеточных пушных зверей, Киров, 1977, с.16З-164.

-Анакина Ю.Г. – Диагностика и профилактика некоторых заболеваний пушных зверей. – М.: ВНИИТЭИСХ, 1983, 50с.

-Ахназарова В.Д. и др. – Биология  и патология клеточных пушных  зверей. – Тезисы докл. ко II Всесоюзн. науч. конф. 26-29 июля 1977, Киров, 1977, с. 169.

-Берестов В.А., Самсонов В.А. – Плазмоцитоз (алеутская болезнь) норок. -Карельское книжное издательство, Петрозаводск, 1969, 72 с.

-Бузинов И.А. и др. - Кролиководство  и звероводство, 1967а, № 2, с. 34-35.

-Бузинов И.А. и др. – Кролиководство  и звероводство, 1967, № 3, с. 28-29.

-Влазнев В.П. и др., 1987 (Неопубликованные  материалы).

-Кальницкий Н.Ф. – Болезни животных  и их профилактика.- Матер. 3 Научно-произв. Конф., март, 1985. – Владивосток, 1987, 28-32.

-Дукур И.И. и др. –Советы звероводу, М., 1968.

-Завьянцев В.Е., Слугин В.С. – Новости звероводства, 1994, № 4 (10), с. 2-5.

-Карелин С.П. - Кролиководство и  звероводство, 1998, № 3, с.27-29.

-Кочлашвили Т.И. – Иммуногенетическое  исследование норок в связи  с алеутской болезнью. – Автореф. канд. диис., Новосибирск, 1984.

-Кролиководство и звероводство, 2002, №3, с.30.

-Кролиководство и звероводство, 2003, № 3, с. 14.

-Кузнецов А.Ф. и др. – Ветеринария, 1999, № 10, с. 18-20.

-Литвинов А.М., Яременко Н.А. -Ветеринария, 2001, 5: 3-5.

-Майорова О.А. – Влияние биостимуляторов на организм норок при инфекционной патологии. -Автореф. кад. дисс., М., 2000.

-Обухов И.Л, 2003 (Личное сообщение).

-Обухов И.Л. и др. - Ветеринария, 2003, 10, 22-25.

-Обухов И.Л. и Макова В.М. –  В помощь звероводам (рекламное  приложение к газете «Мягкое золото», 2002, № 9, с. 3-7.

-Попов Н.И. – Кролиководство  и звероводство, 2002, № 6, с. 23.

-Прозоровская Н.Н. и др. -Бюлл. эксп. биол. мед., 1975, № 11, с.77-78.

-Рыжова Т.А. с соавт. – Ветеринария, 2002, № 2, с. 23-24.

-Скалинский Е.И. и др. – Тр. ВГНКИ, 1980, т. 29, 75-78.

-Слугин В.С., Чеботарёв М.И. –  Штамм вируса Morbus aleutica lutreolarum П-1, используемый для специфической диагностики алеутской болезни. – Авт. Свидетельство №661958 с приоритетом от 15 июня 1977г., зарегистр. в реестре изоб. СССР 28 июня 1979 г.