Автор работы: Пользователь скрыл имя, 14 Марта 2015 в 19:35, контрольная работа
Какие вещества экстрагируются органическим растворителем из кислого раствора и почему? Общие свойства этих веществ.
Веществ, экстрагируемые органическим растворителем из кислого раствора это вещества кислотного, нейтрального и частично слабоосновного характера.
К веществам кислотного характера относятся:
органические кислоты: бензойная, салициловая, ацетилсалициловая, пикриновая
Барбитураты: барбитал, фенобарбитал, барбамил, этаминал – Na, бутобарбитал, гексенал, бензонал, циклобарбитал и др.
основанные на реакции электрофильного замещения атомов водорода бензольного кольца на галоген, могут быть использованы для идентификации первичных ароматических аминов. В результате образуются аморфные осадки белого или желтого цвета и происходит обесцвечивание бромной воды.
Первичные амины, в которых аминогруппа соединена с третичным атомом углерода, окисляются в нитросоединения перманганатом калия в водном ацетоне.
происходит моментальное обесцвечивание, характерна для обнаружения новокаина
Новокаин можно обнаружить микрокристаллическими реакциями
прямоугольные пластинки красно-бурого цвета
|
Новокаинамид подтверждают цветной реакцией с гексацианоферратом (II) калия. В присутствии соляной кислоты после нагревания образуется светло-зеленый осадок.
2R3N + K4[Fe(CN)6] + 4HCl → (R3NH)2H2[Fe(CN)6] + 4KCl
Кислый гексацианоферрат (II) алкил- или ариламмония выпадает в осадок.
После перекристаллизации устанавливают температуру плавления. Она должна быть около 185°С.
Новокаинамид в отличие от новокаина при нагревании с ванадатом аммония и концентрированной серной кислотой приобретает вишнево-красное окрашивание
Объектами исследования при интоксикации
могут быть:
-
лекарственные препараты и их остатки;
- биожидкости (кровь - содержит в основном неизмененное соединение, моча - содержит как основное соединение, так и метаболит);
- секционный материал (печень, желудочно-кишечный
тракт, почки – содержат основное
нативное соединение совместно с метаболитами).
В
настоящее время можно выделить два направления
в анализе производных
1,4-бенздиазепина:
I
направление - по продуктам гидролиза
- 2-аминобензофенонам;
II направление - по содержанию в
объектах исследования
Основное преимущество исследования
производных 1,4-бенздиазепина по продуктам
гидролиза - 2-аминобензофенонам – особенно
при их получении в процессе деструкции
ткани, состоит в том, что данный способ
позволяет суммарно определить нативные
соединения и ряд метаболитов. При правильном
проведении анализа ему придается отрицательное
судебно-химическое значение.
При
положительном результате необходимо
продолжать исследование во втором направлении
(по нативному соединению и метаболитам),
что позволит более точно установить природу
яда (особенно при наличии хлордиазепоксида,
диазепама, оксазепама, которые имеют
ряд обоих метаболитов и гидролизуются
до 2-амино-5-хлор-бензофенона).
Схема исселедования:
I.Изолирование.
20 мл мочи подщелачивают NaOH до рН 10. Экстрагируют дважды хлороформом двойным объемом. Органический растворитель упаривают в токе теплого воздуха.
Хроматографическая очистка и обнаружение.
Система для хроматографирования - хлороформ – диоксан – ацетон – 25%-ный раствор аммиака (45:47,5:5:2,5). Реагенты, используемые для проявления пластинки.
Проявляют пластинку реактивом Драгендорфа. Производные 1,4-бензодиазепина обнаруживаются в виде оранжево-коричневых пятен.
Вследствие особенностей распределения и метаболизма производных 1,4-бензодиазепина, их определение целесообразно проводить по продуктам их гидролиза – аминобензофенонам. Это позволяет определять общее количество препаратов (как сумму нативного соединения и его метаболитов) в биологической жидкости.
II.Изолирование.
К 10 мл анализируемой мочи или 2 мл крови добавляют соответственно 10 мл и 2 мл концентрированной НСl и нагревают в колбе с обратным холодильником на кипящей водяной бане в течение 1 часа (кислотный гидролиз). По окончании реакции гидролизат нейтрализуют насыщенным раствором NaOH, доводят рН до 8-10 и экстрагируют дважды хлороформом (10 мл х 2 для мочи и 5 мл х 2 для крови). Слой органического растворителя отделяют на делительной воронке, а затем в объединенных экстрактах упаривают органический растворитель под струей теплого воздуха до объема в несколько капель для ТСХ-анализа и досуха для количественного определения.
Хроматографическая очистка и обнаружение.
Остаток экстракта переносят на стартовую линию пластинки “Силуфол”. На ту же стартовую линию наносят пятно метчиков, состоящее из смеси бензофенонов, производных 1.4-бензодиазепина (10-15 мкг каждого). Пробег фронта растворителя 10 см. Подвижная фаза – бензол. По окончании хроматографирования бензол удаляют с пластинки током теплого воздуха. При концентрации бензофенонов более 5 мкг/мл, их можно обнаружить по собственной желтой окраске или флюоресценции в УФ-свете, при меньших концентрациях – по флюоресценции в УФ-свете. Возможно также обнаружения пятен на хроматограммах, включающим гидролиз бензодиазепинов до соответствующих производных первичных аминобензофенонов, с последующим диазотированием по реакции Браттона — Маршала. Образованные при этом азокрасители имеют четко выраженное фиолетовое окрашивание. Метод рекомендован для мочи, т.к. сильный кислый гидролиз не подходит для крови и сыворотки.
Реагенты, используемые для проявления пластинки.
1. Нитрит натрия, NaNO2, свежеприготовленный 0,1%-ный раствор.
2. Соляная кислота, НСl, 2 М раствор.
3. Мочевина, (NH2)2CO, насыщенный раствор (для удаления избытка
нитрита натрия). Пластинку опрыскивают через 2 минуты.
4. N-2-нафтилэтилендиаминдихлорид
(или щелочной раствор β-
В месте локализации аминобензофенонов появляется оранжево-красное окрашивание.
Объектами исследования на обнаружение наркотических средств, психотропных и других токсических веществ могут быть моча, кровь, слюна, волосы, ногти, потожировые выделения. Объекты небиологического происхождения, в данном случае таблетки.
Моча. Процедура отбора пробы должна производиться в условиях, исключающих подмену или замену ее другими жидкостями. Проба мочи собирается в прозрачный стеклянный широкогорлый градуированный сосуд объемом 300-600 мл. Объем пробы должен быть не менее 200 мл.
Кровь отбирается при строгом соблюдении асептических условий из поверхностной вены через иглу самотеком в сухой пенициллиновый флакон, одержащий раствор гепарина (3-5 капель на каждые 10 мл крови). Флакон тотчас же закрывают стандартной резиновой пробкой, фиксируют пробку, содержимое флакона сразу же перемешивают. Для химико-токсикологического исследования необходимо не менее 10 мл крови, для исследования только на наличие алкоголя достаточно 2-3 мл крови.
Слюна отбирается в стерильный сухой флакон из-под пенициллина в количестве 5 мл и тут же закрывается пробкой.13У всех флаконов с отобранными пробами (мочи, слюны или крови) фиксируют пробки алюминиевыми колпачками с помощью приспособления для обжима колпачков, обеспечивающего герметизацию флакона, и ставят их в холодильник. В случае герметизации другим способом флаконы должны быть опечатаны.
Волосы отбирают отдельно с лобной, теменной, затылочной, правой и левой височных областей волосистой части головы в виде пучка в количестве не менее 15-20 волос, которые обрезаются у корня ножницами как можно ближе к коже.
Ногти отбирают отдельно с каждой руки или, при необходимости, с каждой ноги. Ногти обрезаются ножницами по возможности ближе к коже.
Отбор образцов потожировых выделений на руках и других участках тела производится ватным тампоном, смоченным спиртом. Вес тампона должен составлять 400-500 мг при расходе этанола до 1 мл. Данным тампоном тщательно протираются поверхности рук и лица (главным образом вокруг рта), после чего тампон высушивается на воздухе. Во избежание взаимопередачи исследуемых веществ с одного тампона на другой, каждый из них упаковывают в отдельный полимерный пакет, имеющий
соответствующую маркировку. Все полученные пакеты с образцами помещают в один общий конверт, который опечатывают.
Для проведения химико-токсикологических исследований на наличие алкоголя и его суррогатов, наркотических средств, психотропных и других токсических веществ, вызывающих опьянение (интоксикацию), и их метаболитов моча доставляется в ХТЛ не позднее двух суток после отбора, до отправки в ХТЛ моча хранится в холодильнике при температуре 0-2°С.
Для обнаружения этилового спирта в крови и моче применяют метод газожидкостной хроматографии.
Изолирование.
Изолирование методом дистилляции с водяным паром.
Идентификация
2.1 Проведение
предварительных качественных
Реакция Рапопорта. Обследуемый тщательно прополаскивает рот и дует в трубку, конец которой опущен в 0,5% р-р KMnO4 в течение 15с. В контроле жидкость будет розовой, в опыте - обесцветится при наличии в выдыхаемом воздухе этанола. Реакция неспецифична, т.к. может быть положительной при наличии ацетона (диабетическая кома), эфира, метанола, сероводорода, бензина.
2КMnO4+3C2H5OH = 2KOH+2MnO2+3CH3CHO+2H2O.
Реакция Рапопорта-Архангеловой. Техника реакции та же, но вместо KMnO4 в пробирки добавляют по 1-3 кап бихромата калия.
K2Cr2O7 + 4H2SO4 + 3C2H5OH ---> Cr2(SO4)3 + K2SO4 + 3 CH3-COH + 7H2O
Реакция Мохова-Шинкаренко. Оборудование: специальные индикаторные трубки, имеющие индикаторную набивку - мелкозернистый силикагель, обработанный р-ром хромового ангидрида в конц. H2SO4. Обследуемый берет трубку в рот со стороны ее широкого конца и продувает воздух в течение 20-25с. При наличии в выдыхаемом воздухе этанола желтая окраска индикатора меняется на зеленую или голубоватую.
Проба на содержание этанола в крови или моче по Попову. В одну из пробирок помещают 1 мл исследуемой крови или мочи и разбавляют ее 5 мл дистиллированной Воды, плотно закрывают пробкой с проходящей через нее стеклянной трубкой и нагревают на пламени горелки до кипения. Если в крови или моче содержится этанол, его пары начинают поступать в трубку. Создается своеобразная картина бурлящей жидкости на протяжении 2-10 см трубки. У конца ее выходящие пары иногда удается поджечь; они горят голубоватым пламенем.
2.2 Метод газожидкостной хроматографии
Во флакон из-под пенициллина вносят 0,5 мл исследуемой крови или мочи и 0,5 мл 50 %-го раствора трихлоруксусной кислоты. Флакон закрывают резиновой пробкой, которую закрепляют специальным фиксатором. После этого во флакон через резиновую пробку с помощью шприца вводят 0,25 мл 30%-го раствора нитрита натрия. Содержимое флакона хорошо взбалтывают в течение одной минуты. Затем из флакона другим шприцом набирают 3 мл газообразной фазы, которую вводят в дозатор хроматографа и хроматографируют. Если совпадает время удерживания эталонного вещества и вещества, содержащегося в крови или в моче, делают вывод о наличии этилового спирта в исследуемых биологических жидкостях.
С 2 Н 5 ОН + ССl 3 СООН + KNO 2 ---> C 2 H 5 ONO + CC1 3 COOK + Н 2О
Условия хроматографирования: хроматограф,
снабженный катарометром; металлическая
колонка длиной 100 см, диаметром 0,6 см; твердый
носитель: сферохром, хезасорб или другие
носители; неподвижная жидкая фаза: полиэтиленгликоль
(мол. масса 1000—1500), нанесенный на твердый
носитель в количестве 12 %; температура
термостатов колонки и детектора 75 °С,
температура дозатора комнатная; газ-носитель:
технический азот, пропускаемый через
хроматограф со скоростью 50—60 мл/мин;
ток детектора 60—100 мА; скорость движения
диаграммной ленты 720 мм/ч.
2.3Метод микродиффузии
2.3 Качественное обнаружение этилового алкоголя в дистиллятах.
Реакция образования йодоформа. При исследовании осадка йодоформа под микроскопом наблюдаются характерные шестиугольные таблички и звездочки. Реакция имеет отрицательное значение
I2 + 2NaOH → NaOI + NaI + H2O
C2H5OH + NaOI → CH3COH + NaI + H2O
CH3COH + 3NaOI →CI3COH + 3NaOH