РЕГЕНЕРАЦИЯ. Более
глубокое понимание механизмов
регенерации и дифференцировки несомненно
откроет много новых возможностей для
использования этих процессов в лечебных
целях. Фундаментальные исследования
уже внесли большой вклад в развитие методов
пересадки кожи и роговицы. В большинстве
дифференцированных тканей сохраняются
клетки, способные к пролиферации и дифференцировке,
но существуют ткани (в частности, центральная
нервная система у человека), которые,
будучи полностью сформированными, не
способны к регенерации. Примерно в годовалом
возрасте центральная нервная система
человека содержит положенное ей число
нервных клеток, и хотя нервные волокна,
т.е. цитоплазматические отростки нервных
клеток, способны регенерировать, случаи
восстановления клеток головного или
спинного мозга, разрушенных в результате
травмы или дегенеративного заболевания,
неизвестны. Классическими примерами
замещения нормальных клеток и тканей
в организме человека служит обновление
крови и верхнего слоя кожи. Наружный слой
кожи - эпидермис - лежит на плотном соединительнотканном
слое, т.н. дерме, снабженной мельчайшими
кровеносными сосудами, доставляющими
ей питательные вещества. Эпидермис состоит
из многослойного плоского эпителия. Клетки
его верхних слоев постепенно трансформируются,
превращаясь в тонкие прозрачные чешуйки
- процесс, называемый ороговением; в конце
концов эти чешуйки слущиваются. Такое
слущивание особенно заметно после сильных
солнечных ожогов кожи. У земноводных
и пресмыкающихся сбрасывание ороговевшего
слоя кожи (линька) происходит регулярно.
Ежедневная утрата поверхностных клеток
кожи компенсируется за счет новых клеток,
поступающих из активно растущего нижнего
слоя эпидермиса. Различают четыре слоя
эпидермиса: наружный роговой слой, под
ним - блестящий слой (в котором начинается
ороговение, и его клетки при этом становятся
прозрачными), ниже - зернистый слой (в
его клетках накапливаются пигментные
гранулы, что вызывает потемнение кожи,
особенно под действием солнечных лучей)
и, наконец, самый глубокий - зачатковый,
или базальный, слой (в нем на протяжении
всей жизни организма происходят митотические
деления, дающие новые клетки для замены
слущивающихся). Клетки крови человека
и других позвоночных тоже постоянно обновляются.
Каждому типу клеток свойственна более
или менее определенная продолжительность
жизни, по истечении которой они разрушаются
и удаляются из крови другими клетками
- фагоцитами ("пожирателями клеток"),
специально приспособленными для этой
цели. Новые кровяные клетки (взамен разрушившихся)
образуются в кроветворных органах (у
человека и млекопитающих - в костном мозге).
Если потеря крови (кровотечение) или разрушение
клеток крови под действием химических
веществ (гемолитических агентов) наносят
клеточным популяциям крови большой ущерб,
кроветворные органы начинают продуцировать
больше клеток. При потере большого количества
эритроцитов, снабжающих ткани кислородом,
клеткам тела угрожает кислородное голодание,
особенно опасное для нервной ткани. При
недостатке лейкоцитов организм теряет
способность сопротивляться инфекциям,
а также удалять из крови разрушившиеся
клетки, что само по себе ведет к дальнейшим
осложнениям. В нормальных условиях потеря
крови служит достаточным стимулом для
мобилизации регенеративных функций кроветворных
органов.
Реакции тканей на аномальные
условия. При повреждении тканей
возможна некоторая утрата типичной
для них структуры в качестве
реакции на возникшее нарушение.
Механическое повреждение.
При механическом повреждении (разрезе
или переломе) тканевая реакция направлена
на то, чтобы заполнить образовавшийся
разрыв и воссоединить края раны. К
месту разрыва устремляются слабо
дифференцированные элементы тканей,
в частности фибробласты. Иногда
рана бывает так велика, что хирургу
приходится вносить в нее кусочки
ткани, чтобы стимулировать начальные
стадии процесса заживления; для этого
используют обломки или даже целые
куски кости, полученные при ампутации
и хранящиеся в "банке костей".
В тех случаях, когда кожа, окружающая
большую рану (например, при ожогах),
не может обеспечить заживление, прибегают
к пересадкам лоскутов здоровой кожи,
взятых с других частей тела. Такие
трансплантаты в некоторых случаях
не приживляются, поскольку пересаженной
ткани не всегда удается образовать
контакт с теми частями тела, на
которые ее переносят, и она отмирает
или отторгается реципиентом.
Инородные объекты. Очень
характерная реакция возникает
в ответ на проникновение в
ткань чужеродных объектов. Если, например,
пуля попала в часть тела, не имеющую
жизненно важного значения, она вскоре
оказывается отгороженной от прилежащих
тканей образовавшимся вокруг нее отложением
волокнистой ткани. Аналогичная реакция
возникает при проникновении в ткани некоторых
паразитов. Так, трихинелла (Trichinella spiralis),
попадающая в организм человека с плохо
прожаренной зараженной свининой, проникает
в мышцы, где волокнистая ткань образует
вокруг нее капсулу. В легких туберкулезных
больных вокруг скоплений болезнетворных
бактерий образуются туберкулезные бугорки,
состоящие из концентрических слоев ткани.
В этих и других случаях ткани организма
стараются создать барьер между инородным
телом, будь оно живым или неживым, и собственными
тканями организма.
Давление. Омозолелости возникают
при постоянном механическом повреждении
кожи в результате оказываемого на нее
давления. Они проявляются в виде хорошо
знакомых всем мозолей и утолщений кожи
на подошвах ног, ладонях рук и на других
участках тела, испытывающих постоянное
давление. Удаление этих утолщений путем
иссечения не помогает. До тех пор, пока
давление будет продолжаться, образование
омозолелостей не прекратится, а срезая
их мы лишь обнажаем чувствительные нижележащие
слои, что может привести к образованию
ранок и развитию инфекции.
Методы изучения тканей. Разработано
множество специальных методов
изготовления тканевых препаратов для
микроскопического исследования. Существует
также особый метод, называемый культурой
тканей, позволяющий наблюдать и
исследовать живые ткани.
Культура ткани. Изолированные
кусочки тканей или органов помещают
в питательные растворы в условиях,
исключающих возможность заражения
микробами. В этой необычной среде
ткани продолжают расти, проявляя многие
особенности (такие, как потребность
в питательных веществах, кислороде,
определенном пространстве и т.п.), характерные
для них в нормальных условиях,
т.е. когда они находятся в живом
организме. Культивируемые ткани могут
сохранять и многие из своих структурных
и функциональных признаков: фрагменты
сердечной мышцы продолжают ритмически
сокращаться, кожа зародыша продолжает
расти и дифференцируется в обычном
направлении. Однако иногда культивирование
выявляет такие свойства ткани, которые
у нее в обычных условиях не
выражены и могли бы остаться неизвестными.
Так, изучая строение клеток аномальных
новообразований (опухолей), не всегда
удается установить их принадлежность
к той или иной ткани или
их эмбриональное происхождение. Однако
при выращивании в искусственной
питательной среде они приобретают
черты, характерные для клеток определенной
ткани или органа. Это может
оказаться чрезвычайно полезным
не только для правильной идентификации
опухоли, но и для установления органа,
в котором она первоначально
возникла. Некоторые клетки, например
фибробласты (клетки соединительной ткани),
очень легко поддаются культивированию,
что делает их ценными экспериментальными
объектами, в частности в тех
случаях, когда необходим однородный
материал для испытания новых
лекарственных препаратов. Выращивание
тканевой культуры требует определенных
навыков и оборудования, однако это
важнейший метод изучения живых тканей.
Кроме того, он позволяет получить дополнительные
данные о состоянии тканей, изучавшихся
обычными гистологическими методами.
Микроскопические исследования
и гистологические методы. Даже самый
поверхностный осмотр позволяет
отличить одни ткани от других. Мышечную,
костную, хрящевую и нервную ткани,
а также кровь можно распознать
невооруженным глазом. Однако для
детального исследования необходимо изучать
ткани под микроскопом при
большом увеличении, позволяющем
увидеть отдельные клетки и характер
их распределения. Под микроскопом
можно исследовать влажные препараты.
Пример такого препарата - мазок крови;
для его изготовления наносят
каплю крови на предметное стекло и размазывают
по нему в виде тонкой пленки. Однако эти
методы обычно не позволяют получить полную
картину распределения клеток, а также
участков, в которых ткани соединяются.
Живые ткани, извлеченные из тела, подвергаются
быстрым изменениям; между тем любое самое
незначительное изменение ткани ведет
к искажению картины на гистологическом
препарате. Поэтому очень важно сразу
же после извлечения ткани из организма
обеспечить ее сохранность. Это достигается
с помощью фиксаторов - жидкостей различного
химического состава, которые очень быстро
убивают клетки, не искажая детали их строения
и обеспечивая сохранение ткани в этом
- фиксированном - состоянии. Состав каждого
из многочисленных фиксаторов был разработан
в результате многократного экспериментирования,
и тем же способом многократных проб и
ошибок было установлено нужное соотношение
в них разных компонентов. После фиксации
ткань обычно подвергают обезвоживанию.
Поскольку быстрый перенос в спирт высокой
концентрации привел бы к сморщиванию
и деформации клеток, обезвоживание производят
постепенно: ткань проводят через ряд
сосудов, содержащих спирт в последовательно
возрастающей концентрации, вплоть до
100%. После этого ткань обычно переносят
в жидкость, хорошо смешивающуюся с жидким
парафином; чаще всего для этого используют
ксилол или толуол. После кратковременного
выдерживания в ксилоле ткань способна
поглощать парафин. Пропитывание ведется
в термостате, чтобы парафин оставался
жидким. Всю эту т.н. проводку производят
вручную или же помещают образец в специальный
прибор, который проделывает все операции
автоматически. Используется и более быстрая
проводка с использованием растворителей
(например, тетрагидрофурана), способных
смешиваться как с водой, так и с парафином.
После того как кусочек ткани полностью
пропитался парафином, его помещают в
небольшую бумажную или металлическую
форму и добавляют в нее жидкий парафин,
заливая им весь образец. Когда парафин
затвердеет, получается твердый блок с
заключенной в нем тканью. Теперь ткань
можно нарезать. Обычно для этого используют
специальный прибор - микротом. Образцы
тканей, взятые во время операции, можно
нарезать, предварительно заморозив, т.е.
не проводя обезвоживания и заливки в
парафин. Описанную выше процедуру приходится
несколько модифицировать, если ткань,
например кость, содержит твердые включения.
Минеральные компоненты кости необходимо
предварительно удалить; для этого ткань
после фиксации обрабатывают слабыми
кислотами - этот процесс называют декальцинированием.
Наличие в блоке кости, не подвергшейся
декальцинированию, деформирует всю ткань
и повреждает режущий край ножа микротома.
Можно, однако, распилив кость на мелкие
кусочки и обтачивая их каким-либо абразивом,
получить шлифы - чрезвычайно тонкие срезы
кости, пригодные для изучения под микроскопом.
Микротом состоит из нескольких частей;
главные из них - нож и держатель. Парафиновый
блок прикрепляют к держателю, который
перемещается относительно края ножа
в горизонтальной плоскости, а сам нож
при этом остается неподвижным. После
того как получен один срез, держатель
при помощи микрометрических винтов продвигают
вперед на определенное расстояние, соответствующее
желаемой толщине среза. Толщина срезов
может достигать 20 мкм (0,02 мм) или составлять
всего 1-2 мкм (0,001-0,002 мм); она зависит от
размеров клеток в данной ткани и обычно
колеблется от 7 до 10 мкм. Срезы парафиновых
блоков с заключенной в них тканью помещают
на предметное стекло. Далее удаляют парафин,
помещая стекла со срезами в ксилол. Если
нужно сохранить в срезах жировые компоненты,
то для заливки ткани вместо парафина
используют карбовакс - синтетический
полимер, растворимый в воде. После всех
этих процедур препарат готов для окрашивания
- очень важного этапа изготовления гистологических
препаратов. В зависимости от типа ткани
и характера исследования применяют разные
методы окрашивания. Эти методы, как и
методы заливки ткани, вырабатывались
в ходе многолетнних экспериментов; однако
постоянно создаются и новые методы, что
связано как с развитием новых направлений
исследований, так и с появлением новых
химических веществ и красителей. Красители
служат важным инструментом гистологического
исследования в силу того, что они по-разному
поглощаются разными тканями или их отдельными
компонентами (клеточными ядрами, цитоплазмой,
мембранными структурами). В основе окрашивания
лежит химическое сродство между сложными
веществами, входящими в состав красителей,
и определенными компонентами клеток
и тканей. Красители применяют в виде водных
или спиртовых растворов, в зависимости
от их растворимости и выбранного метода.
После окрашивания препараты промывают
в воде или спирте, чтобы удалить избыток
красителя; после этого окрашенными остаются
только те структуры, которые поглощают
данный краситель. Чтобы препарат сохранялся
в течение достаточно долгого времени,
окрашенный срез накрывают покровным
стеклом, смазанным каким-нибудь клейким
веществом, которое постепенно затвердевает.
Для этого используют канадский бальзам
(природная смола) и различные синтетические
среды. Приготовленные таким образом препараты
можно хранить годами. Для изучения тканей
в электронном микроскопе, позволяющем
выявить ультраструктуру клеток и их компонентов,
применяют другие методы фиксации (обычно
с использованием осмиевой кислоты и глутаральдегида)
и другие среды для заливки (обычно эпоксидные
смолы). Специальный ультрамикротом со
стеклянным или алмазным ножом позволяет
получать срезы толщиной менее 1 мкм, а
постоянные препараты монтируют не на
предметных стеклах, а на медных сеточках.
Недавно были созданы методы, позволяющие
применять ряд обычных гистологических
процедур окрашивания после того, как
ткань была подвергнута фиксации и заливке
для электронной микроскопии. Для описанного
здесь трудоемкого процесса необходим
квалифицированный персонал, однако при
массовом производстве микроскопических
препаратов используют конвейерную технологию,
при которой многие этапы обезвоживания,
заливки и даже окрашивания производятся
автоматическими приборами для проводки
тканей. В тех случаях, когда необходимо
срочно поставить диагноз, в частности
во время хирургической операции, ткани,
полученные при биопсии, быстро фиксируют
и замораживают. Срезы таких тканей изготавливают
за несколько минут, не заливают и сразу
окрашивают. Опытный патоморфолог может
по общему характеру распределения клеток
сразу поставить диагноз. Однако для детального
исследования такие срезы непригодны.