Противоэпизоотологических и профилактических мероприятий проводимых в ННЦ ХГЗВА для КРС

   Бактериологическая диагностика бруцеллеза предусматривает бактериоскопию мазков из патологического материала и при необходимости постановку биопробы на морских свинках. Бактериоскопия мазков-отпечат-ков, окрашенных по Граму и специальными методами (по Козловскому, Шуляку—Шину), имеет ориентировочное значение. Выделение культуры бруцелл при посеве биоматериала на специальные питательные среды и положительная биопроба на морских свинках имеют решающее значение при постановке бактериологического диагноза на бруцеллез.

   Для массовых профилактических и диагностических прижизненных исследований скота на бруцеллез широко используют РА, РСК, РДСК, РДП и РИД. Применяют также РБП (роз-бенгал проба) и кольцевую реакцию (КР) с молоком коров. Все указанные реакции используют в серологической диагностике бруцеллеза у крупного рогатого скота, яков, зебу, буйволов.

   В 2014 году в ННЦ ХГЗВА  на бруцеллёз было происследованно 40 голов КРС. Исследование проводится, согласно плану, 1 раз в год в первом квартале. Материал (сыворотку крови) направили в Областную лабораторию. Как и ожидалось, лабораторные исследования показали, что КРС ННЦ ХГЗВА не болеют бруцеллёзом.

   Украина является свободной от бруцеллеза страной. Но диагностировать его нужно, так как во многих странах Европы, Азии, Америки бруцеллез является проблемой. И завоз этого заболевания в нашу благополучную страну возможен.

    

Исследование КРС на лейкоз.

   Уже многие годы лейкоз  крс в вопросах лечения и профилактики считается одним из самых проблематичных заболеваний. Впервые лейкоз крс был обнаружен в 1876 году в Восточной Пруссии. Но тогда еще не знали, что это заболевание крупного рогатого скота имеет вирусную природу.

    Диагноз на лейкоз, как  и на любое другое заболевание, ставится комплексно, на основании  результатов эпизоотологического, клинико-гематологического, серологического, вирусологического, патологоанатомического  и гистологического исследований. Всех животных старше полугода  проверяют на РИД — реакцию иммунодиффузии. С этого серологического метода обычно начинается ежегодное исследование поголовья.

   Кровь для исследования на РИД необходимо брать не ранее 15 суток после вакцинаций или исследований на туберкулез. А также за 30 суток до и 30 суток после отела. Через 1-2 месяца после внедрения вируса в кровь животного там появляются антитела, которые остаются в организме. Так что если животное однажды дало положительную РИД, то оно является пожизненным носителем вируса лейкоза.

   При положительной РИД животное не считается больным, так как заболевание еще не проявляется никаким образом. В данном случае это — вирусоносительство. А животное является РИД-положительным по причине того, что организм уже столкнулся с вирусом и произошла выработка антител. Молоко от коров-вирусоносителей можно употреблять в кипяченом или пастеризованном виде.

   Таких животных, как  правило, исследуют гематологически, то есть методом микроскопического исследования крови (подсчет лейкоцитов). Кровь для такого исследования берут в пробирки с цитратом для предотвращения свертывания, и, что немаловажно, необходимо обеспечить своевременную доставку крови в лабораторию, чтобы исследование проводилось не позднее 36 часов после взятия проб. При положительном или сомнительном результате исследования животное относится к категории больных лейкозом. Но через 1-2 месяца нужно провести повторное исследование по гематологии. При повторном положительном результате животное считается больным и подлежит убою.

   Исследования в  ННЦ ХГЗВА на лейкоз проводятся, согласно плану, один раз в  год. В 20014 году в районную лабораторию для исследования направили кровь 92 голов КРС: 46 – в первом квартале, 46 – в третьем квартале. Результаты в обоих случаях были отрицательными.

 

Исследование КРС на лептоспироз

   Лептоспироз (Leptospirosis) – инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных. 

     В естественных условиях лептоспирозом болеют чаще свиньи и крупный рогатый скот. Восприимчивы также буйволы, лошади, овцы, козы, собаки, лисицы, песцы, норки, кошки, домашние и дикие птицы, белые мыши и другие животные из отрядов грызунов, насекомоядных, хищных и сумчатых. К экспериментальному заражению чувствительны золотистые хомяки, крольчата, морские свинки, щенки собак, котята, белые и серые мыши и др.

Лептоспирозом болеют животные любого возраста, но молодые более восприимчивы, и болезнь протекает у них тяжелее, чем у взрослых. Установлена выраженная видовая чувствительность животных 3 лептоспирам определенных серологических групп и вариантов. Так, основными возбудителями лептоспироза свиней являются L. pomona и L. tarassovi; крупного рогатого скота – L. hebdomadis, L. pomona. L. grippotyphosa и L. tarassovi; мелкого рогатого скота – L. grippo-typhosa, L. pomona и L. tarassovi.

   Лептоспироз чаще встречается в местностях, где почва влажная, содержит много гумуса, имеет нейтральную или слабощелочную реакцию. Болезнь наблюдается в любое время года, но у животных с пастбищным

содержанием преимущественно в летне-осенний период. Болезнь проявляется в виде небольших эпизоотии и спорадических случаев.

   Переболевание лептоспирозом сопровождается формированием вначале нестерильного, а затем стерильного (по окончании срока лептоспироносительства) иммунитета высокой специфичности, напряженности и значительной продолжительности. 
    Для активной иммунизации животных используют поливалентную депонированную вакцину ВГНКИ, выпускаемую в двух вариантах (различное сочетание серогрупп лептоспир). С профилактической целью ее применяют в неблагополучных, откормочных и угрожаемых по лептоспирозу хозяйствах, при выпасе животных в зоне природного очага болезни, при выявлении в хозяйстве животных, сыворотка крови которых реагирует на лептоспироз по РМА или РА, и в районах с отгонным животноводством. Сыворотку крови вакцинированных животных не исследуют на лептоспироз в течение 2 – 3 мес после вакцинации. 
    Для пассивной иммунизации применяют поливалентную сыворотку против лептоспироза сельскохозяйственных и промышленных животных. Сыворотка, как и вакцина, не освобождает организм животных от лептоспироносительства, не профилактирует аборты у зараженных животных. 
   Профилактика и меры борьбы. В целях недопущения возникновения лептоспироза ввод животных для племенных и пользовательных целей разрешается только из благополучных хозяйств при отрицательных результатах серологического исследования по РМА или РА. Всех поступающих в хозяйство животных карантинируют в течение 30 дней и исследуют на лептоспироз. Не допускают ввода (ввоза) в племенные хозяйства животных или продуктов их убоя из неблагополучных хозяйств; эксплуатации производителей, сыворотка крови которых дает положительную РМА или РА; участия в выставках невакцинированных против лептоспироза собак; скармливания пушным зверям и собакам сырых продуктов убоя больных животных и лептоспироносителей. 
   Проводят плановые диагностические исследования животных. В 2014 году в ННЦ ХГЗВА происследованно на лептоспироз было 15 голов КРС.  
    Профилактическую вакцинацию против лептоспироза в ННЦ ХГЗВА проводят, согласно государственной инструкции, один раз в год.   

 

Прививание против сибирской язвы

   Сибирская язва (Anthrax) — остропротекающая инфекционная болезнь, характеризующаяся признаками септицемии и тяжелой интоксикации, а также образованием карбункулов.

   Для  создания пассивного иммунитета  используется гипериммунная сыворотка  или глобулин, который вводят  животным в половинчатой дозе. После введения вышеуказанных препаратов иммунитет у животных наступает сразу и длится до 10−14дней.

Первая вакцина против сибирской язвы была предложена Л. Пастером в 1881г.

В России подобную вакцину изготовил Л.С.Ценковский в 1882г.

В 1940г Н.Н. Гинсбург в СССР создал высокоиммунногенную и практически ареактогенную для животных и людей споровую вакцину против сибирской язвы.

   В  ННЦ ХГЗВА для иммунизации  КРС используют вакцину со  штамма «Sterre 34F2», Херсонской государственной биофабрики. Следуя плану противоэпизоотологических мероприятий ННЦ, вакцинация проводится один раз в год. В 2014 году в ННЦ ХГЗВА против сибирки было вакцинировано 92 головы КРС: 46 – в первом квартале, 46 – в третьем.

   Вакцина  вводится подкожно в дозе 1.0мл. При вакцинации соблюдают правила асептики и антисептики. Место ведения вакцины дезинфицируют 70%-ным раствором этилового спирта.

   Иммунитет у привитых животных наступает через 10 дней и длиться не менее 12 месяцев. Ветспециалисты в течение 10 дней после вакцинации проводят наблюдение за вакцинированными животными.

   Молоко от привитых животных разрешается использовать без ограничений. Убой вакцинированных животных разрешается через 10 дней после вакцинации. В случае вынужденного убоя вакцинированных животных до этого срока тушу и боенские отходы направляют в промышленную переработку или сжигают.

   О проведенной вакцинации на привитых животных составляют акт с указанием количества привитых животных (по видам), наименования использованной вакцины, предприятия — изготовителя, номера серии и госконтроля, даты ее изготовления, количества израсходованной вакцины, а также фамилию ветспециалиста вакцинировавшего скот и наблюдавшего за его состоянием и содержанием вакцинированных животных. К акту прилагают описи животных принадлежащих сельхозпредприятию, ЛПХ и КФХ с указанием фамилии владельца, вида, количества и возраста принадлежащих ему животных.

   Если по какой-либо причине (острое заболевание, низкая упитанность, глубокая стельность и т.п.) животное нельзя привить, его включают в отдельную опись с указанием причины, из-за которой оно не было вакцинировано, и возможного срока прививки, о чем ставят в известность владельца животного.

   Документы (акты и описи приложение 4,5) подлежат хранению у ветврача и в учреждении госветслужбы в течение 2 лет.

   Ветеринарные специалисты в течение 14 дней после вакцинации обязаны вести наблюдение за всеми вакцинированными животными.

 

Вакцинация против хламидиоза.

    Хламидиоз крупного  рогатого  скота -  инфекционная болезнь,  протекающая хронически и характеризуется  поражением околоплодных оболочек, в результате чего наступают аборты, преждевременное рождение мертвых  или нежизнеспособных телят. У телят хламидиоз протекает с поражением респираторных путей, желудочно-кишечного тракта, суставов и глаз.

   Хламидии  в организме зараженных животных  индуцируют как гуморальный, так  и клеточный иммунитет. Иммунитет  носит нестерильный характер. При  хламидиозах над защитными иммунными реакциями преобладают иммунопатологические с образованием циркулирующих иммунных комплексов.

   Вместе с тем антитела при хламидиозе хотя не способны предотвратить заболевание, но играют важную роль в обеспечении устойчивости к заражению малыми дозами хламидии, что обычно встречается при естественном инфицировании животных.

   Специфическая профилактика хламидиоза крупного рогатого скота разработана во многих странах, в том числе в Украине. Вакцинация представляет собой обязательное мероприятие при оздоровлении хозяйств от этой болезни.

   Вакцинация  против хламидиоза в ННЦ ХГЗВА  проводится на основании результатов  серологических исследований.

   Для специфической профилактики крупному рогатому скоту в ННЦ ХГЗВА применяют эмульсин-вакцину против хламидиоза животных культуральную, инактивированную. Иммунитет у привитых животных сохраняются в течение 1 года после прививок.

 

7.Выводы и предложения.

 

   Работа  выполнена на ННЦ ХГЗВА. Данное  хозяйство является благополучным  по заразной патологии. На основании чего можно сделать вывод, что меры профилактики, применяемые на уч.хозе, являются максимально эффективными.

   Но  вакцинация и диагностика заразной  патологии не единственные меры  профилактики. Так как профилактика  может быть максимально эффективной  только при условии, что она  комплексная. Одной из составляющих  профилактики заразных болезней  является контроль за санитарным состоянием животноводческих помещений, инвентаря, пастбищ и т.д. Вот относительно санитарного состояния у меня есть замечания и предложения.

    Во-первых, я бы порекомендовала оптимизировать механическую уборку животноводческих помещений. Возбудители многих заразных болезней могут долгое время сохраняться в фекалиях и становиться фактором передачи заболевания. На мой взгляд, санитарное состояние зимника является, по меньшей мере, неудовлетворительным.

   Во-вторых, я обратила внимание на рацион  КРС, содержащихся на уч.хозе. И он не соответствует общепринятым нормам кормления. Питание является очень важным фактором поддержания здоровья животного в целом, и иммунной системы в частности. Стойкий иммунитет – это именно то, что позволяет организму справляться с инфекциями самостоятельно. И если питание, это одна из составляющих иммунитета, то нельзя не обращать должного внимания на него.

   В-третьих, на мой взгляд, ННЦ нуждается  в современной механизации. Начиная  от удобного инвентаря, заканчивая  бункерными кормушками и современными  поилками. Я понимаю, что, как правило, все упирается в материальную сторону вопроса. Но механизация производства как минимум облегчила бы труд рабочим уч.хоза и повысила уровень санитарного состояния.

   В-четвертых, я рекомендовала бы придерживаться  санитарных норм в отношении  дезбарьеров. Менять опилки с раствором экоцида в дезбарьерах один раз в четыре дня.

   Но, даже наличие некоторых отрицательных  моментов, смею напомнить, что заразная  патология на ННЦ ХГЗВА не  регистрируется уже по меньшей  мере 5 лет, что говорит о том, что  профилактические мероприятия, проводимые  на уч.хозе, являются эффективными.

 

 

 

 

Список литературы

1. zoovet.kh.ua/index.php?option=com_content&view=article&id=126&Itemid=173
2. Эпизоотология и инфекционные болезни сельскохозяйственных животных. А. А. Конопаткин, И. А. Бакулов, Я. В. Нуйкин и др.; Под ред. А. А. Конопаткина. – М. Колос, 1984. -544с
3. Ветеринарное законодательство Украины. Сборник нормативно-правовых актов. Составители: Яценко И. В., Митрофанов А. В., Бондаревский М.М., Ткачук С. А., Билык Р.И.
4. Загальна епізоотологія. Литвин В.П., Ярчук Б.М. – К.: Урожай, 1995.- 256с
5. Спеціальна епізоотологія. Каришева А.Ф. – К.: Вища освіта, 2002. -703с
6. http://veterinarua.ru/svinovodstvo/102-diagnostika-vnutrennikh-boleznej-zhivotnykh-vasilev-a-v-1956/1931-tuberkulinizatsiya.html

  

  

 

 

  

 

Приложение 1