Заболеваемость гипертонической болезнью на территории Шумерлинского района в зависимости от биогеохимических факторов

 

Затем цилиндры со стандартным раствором NH4CI доводят до 100 мл дистиллированной водой и, закрыв пробками, перемешивают. После этого во все цилиндры прибавляют по 2 мл реактива Несслера, вторично взбалтывают и через 10 минут, вынув пробки, смотрят сверху вниз и сравнивают окраску испытуемой воды с окраской шаблонных цилиндров с хлористым аммонием и среди них находят подходящую по интенсивности окраску к испытуемой воде.

 

Допустим, что интенсивность окраски испытуемой воды оказалась одинаковой с окраской в цилиндре №4, содержащем 1,5 мл раствора NH4CI. Следовательно, в 100 мл воды содержится 1,5 х 0,01 = 0,015 мг азота аммиака, а в 1 л – 0,15 мг.

 

Определение азотистой кислоты (азота нитритов).

 

Выпаривают на водяной бане в фарфоровой чашке досуха 10 мл испытуемой воды. По охлаждении к выпаренному остатку прибавляют 1 мл сульфофенолового раствора и растирают стеклянной палочкой; через 5 минут смесь разводят дистиллированной водой (10–20 мл), прибавляют 10 мл 10% аммиака и переливают содержимое чашки в колориметрический цилиндр Генера, ополаскивая при этом чашку 2–3 раза дистиллированной водой, которую также сливают в цилиндр. Объем жидкости в цилиндре доводят дистиллированной водой до 100 мл. При наличии нитратов в воде жидкость приобретает желтый цвет.

 

Одновременно аналогичным образом выпаривают и обрабатывают 1–10 мл стандартного раствора азотнокислого калия; необходимое количество его определяется содержанием нитратов в исследуемой воде, что устанавливается на основании качественной реакции.

 

Определение хлоридов.

 

В колбу или стакан объемом 300–500 мл наливают пипеткой 100 мл испытуемой воды, прибавляют 2 капли индикатора хромовокислого калия и титруют раствором азотнокислого серебра до появления неисчезающей очень слабой красноватой окраски.

 

Допустим, что на осаждение хлоридов, растворенных в 100 мл испытуемой воды, пошло 12,1 мл раствора AgNO3. Т.к. каждый мл приготовленного раствора AgNO3 связывает 0,9 мг хлора, то очевидно, что 12,1 мл свяжут 0,9х12,1 = 10,89 мг хлора, которые содержались в 100 мл испытуемой воды.

 

Если в 100 мл воды содержится 10,89 мг хлора, то в 1 л связанного хлора содержится 108,9 мг.

 

Определение сульфатов.

 

В коническую колбу наливают 200 мл исследуемой воды, нагревают до кипения и добавляют 1мл 2,5 н. раствора соляной кислоты и 0,5 г хромовокислого бария, после чего вновь кипятят 3–4 минуты; жидкость принимает при этом желто-красную окраску. Сняв колбу с нагревательного прибора, нейтрализуют содержимое 5% раствором аммиака, прибавляя его по каплям до перехода окраски в желто-зеленый цвет и установления нейтральной или слабощелочной реакции на лакмус. Остудив жидкость до температуры 15о, вновь проверяют реакцию и переливают содержимое вместе с образовавшимся осадком хромовокислого бария в мерную колбу емкостью 250 мл и доводят до метки дистиллированной водой. Затем, взболтав жидкость, фильтруют ее через складчатый фильтр, отбрасывая первые порции (20–30мл). Из остальной части фильтрата отмеривают 100 мл, наливают в склянку с притертой пробкой, прибавляют 1г сухого Йодистого калия (или 10 мл 10% раствора его) и 5 мл 2,5 н. соляной кислоты и ставят склянку в холодную воду (8–10о) на 20 минут.

 

Выделившийся в процессе этого йод титруют 0,01 н. раствором гипосульфита, добавляя в конце титрования 2% раствор крахмала. Содержание сульфат-иона SO4++ вычисляют в мг на 1 л воды по формуле:

 

Х = n х К х 0,32 х 12,5,

 

где: n – число мл 0,01 н. раствора гипосульфита, израсходованных на титрование;

 

К – поправочный коэффициент к титру гипосульфита;

 

0,32 – количество мг SO4++, эквивалентное 1 мл 0,01 н. раствора гипосульфита;

 

12,5 – коэффициент пересчета  содержания SO4++ в 100 мл фильтрата  на 1л исследуемой воды.

 

Определение жесткости воды из двух источников.

 

В колбу вместимостью 150–200 мл наливают 10 мл исследуемой воды, доводят объем до 100 мл дистиллированной воды, добавляют 5 мл буферного раствора, 5–7 кап. индикатора и медленно титруют при интенсивном взбалтывании раствора трилона Б концентрации 0,05 моль/дм3 до изменения окраски. Если на титрование расходуется более 10 мл трилона Б необходимо взять меньший объем исследуемой воды. Для устранения влияния Zn и Cu к пробе добавляют 1–2 мл сульфата Na. Если после добавления к воде буферного раствора и индикатора жидкость постепенно обесцвечивается, то следует повторить определение с добавлением к воде, до внесения реактивов, 5 капель раствора гидроксил амина.

 

Общую жесткость исследуемой воды в мг-экв вычисляют по формуле:

 

 

 

 

где:

 

Х – искомая жесткость воды в мг-экв/л;

 

V – объем взятой воды  в мл;

 

а – число мл раствора трилона Б, пошедшее на титрование;

 

0,05 – нормальность раствора  трилона Б;

 

К – поправочный коэффициент к раствору трилона Б;

 

1000 – пересчет на 1 л  воды.

 

Определение железа.

 

В коническую колбу наливают 100 мл испытуемой воды, прибавляют 2 мл концентрированной соляной кислоты и несколько кристалликов бертолетовой соли и кипятят 20–30 минут. После этого содержимое колбы охлаждают водой из водопроводного крана, переливают в мерную колбу емкостью 100 мл, сливают туда же дистиллированную воду после ополаскивания первой колбы и доводят объем дистиллированной водой до метки; все содержимое перемешивают.

 

Параллельно с этим в другую мерную колбу емкостью 100 мл вносят пипеткой 1–2 мл стандартного раствора железо-аммиачных квасцов, прибавляют 2 мл HCI и доводят объем до метки дистиллированной водой.

 

После этого в обе мерные колбы добавляют пипеткой по 2 мл 50% раствор роданистого аммония, отчего содержимое второй колбы окрашивается в красный цвет. Перемешав еще раз жидкость в каждой колбе, переливают их в два цилиндра Генера емкостью 100 мл и приступают к колориметрированию, которое производят обычно способом, путем уравнения окрасок стандартного раствора и испытуемой воды.

 

Исследование почвы.

 

Взятие проб почвы для исследования.

 

Отбор проб производят в 3–5 точках по диагонали с участка площадью 25 м2 с глубины 0,25. Пробы берут буравом или лопатой, перемешивают и из проб, взятых с каждого горизонта, составляют среднюю пробу весом около 1 кг, которую помещают в банку с пробкой и отсылают в лабораторию.

 

В лаборатории пробы подвергают анализу в свежем виде или доводят почву до воздушно-сухого состояния путем высушивания на воздухе с просеиванием через сито.

 

Определение органического азота.

 

В колбу приливают 25–30 мл фенолсерной кислоты, отстаивают 0,5–1 час. Затем вносят в колбу 1г цинковой пыли и оставляют стоять 1–2 часа для восстановления нитрофенол в амидофенол; для ускорения окислительных процессов прибавляют катализатор – 1 г CuSO4 и 5 г K2SO4.

 

Затем колбу нагревают, доводя жидкость до кипения. По обесцвечивания жидкости кипячения продолжают в течение часа, после чего охлаждают и в случае кристаллизации прибавляют 10 – 15 мл концентрированной серной кислоты. После этого в колбу прибавляют 250 – 350 мл дистиллированной воды, взбалтывают и добавляют в избытке 50% щелочи.

 

Далее соединяют колбу с каплеуловителем, холодильником и приемной колбы емкостью 300 – 400 мл. В приемник наливают 40 – 50 мл 0,1 н. раствора серной кислоты и 3 капли метилоранжа. Содержимое колбы взбалтывают и нагревают до кипения, с чего начинается отгонка аммиака, которая продолжается 1 – 1,5 часа. Окончание отгонки определяют пробой с красной лакмусовой бумажкой: отсутствие посинения позволяет прекратить отгонку.

 

Серную кислоту в приемнике титруют 0,1 н. раствором едкого натра и по разнице в титре находят количество азота. 1 мл 0,1 н. раствора серной кислоты соответствует 1,4 мг азота.

 

 

Результат исследования вычисляют по формуле:

 

 

 

где: Х – искомое количество общего азота в мг в 100 г абсолютно сухой почвы;

 

а – разница в титре H2SO4 до и после титрования в мл;

 

1,4 – количество мг азота, соответствующее 1 мл 0,1 н. раствора H2SO4;

 

б – навеска воздушно-сухой почвы в гр;

 

в – процент гигроскопической воды;

 

100 – пересчет на 100 г  почвы;

 

Определение " почвенного белкового" азота.

 

Берут навеску воздушно-сухой почвы в 3 – 5г, просеянной через сито, насыпают ее в пробирку, взвешивают и пересыпают в химический стакан емкостью 150 – 200 мл. Пробирку вновь взвешивают и по разности между первым и вторым взвешиванием определяют точный вес навески почвы.

 

В стакан с навеской приливают 50 мл дистиллированной воды, взбалтываю, кипятят в течение 5 минут, прибавляют 25 мл 6% раствора медного купороса, перемешивают и приливают 25 мл 1,25% раствора едкого натра.

 

Отстоявшийся осадок промывают 5 – 7 раз горячей водой декантацией, переносят на фильтр и промывают теплой водой. Промытый осадок просушивают вместе с фильтром на воронке в сушильном шкафу, после чего фильтр с осадком переносят в колбу, прибавляют 0,3 г сернокислой меди, 5 – 6 г сернокислого калия, 35 мл чистой концентрированной кислоты и, поступая в дальнейшем также как, при определении общего азота, находят искомое количество "почвенного белкового" азота.

 

Анализ водной вытяжки из почвы.

 

Соли аммиака, азотистой и азотной кислоты, хлориды, сероводород и окисляемость определяют в водной вытяжке теми же способами, что и при анализе воды. Содержание минеральных солей выражается в мг на 1 кг почвы; окисляемость – количество мг кислорода, израсходованного на окисление органических веществ водной вытяжки на 100 г почвы.

 

 

Глава 3. Собственные исследования. Изучение распространения заболеваемости ГБ на исследуемой территории за 3 года (2000–2002гг.)

 

Первичный собранный материал был разбит по населенным пунктам (деревни и села, объединенные в администрации), по возрастным интервалам и по полу, то есть был объединен в таблицу (см. таблицы 3.1,3.2,3.3,3.4).

Проанализируем результаты нашего исследования. Мы получили, что заболеваемость АГ в Шумерлинском районе имеет тенденцию к росту: в 2000 году – 25 случаев, в 2001 году – 38 случаев, в 2002 году – 43 случая. Максимальная заболеваемость зарегистрирована в 2002 году за весь изучаемый период (3 года). Заболеваемость ГБ в 2001г. увеличилась, по сравнению с 2000 годом, на 34%. В 2002 году, по сравнению с 2001г. – на 11% (по сравнению с 2000г. – на 41%). По результатам группирования ИП заболеваемости АГ (без полового деления) получили, что заболеваемость ГБ по деревням и селам Шумерлинского района распределена неравномерно. В I группу со сверхвысокими показателями заболеваемости ГБ входят населенные пункты: Б. Алгаши, Р. Алгаши, Речной, д. Шумерля, а в V группу со сверхнизкими показателями – Синькасы, Бреняши, Л. Туваны, Юманаи, Тарн-Сирма. Во II группу с показателями выше среднерайонных входят: Дубовка, Саланчик, Кабаново. К IV группе (показатели ниже среднерайонной) относятся: Пояндайкино, К. Октябрь, Петропавловское, М. Туваны, Егоркино, Туваны, Ходары, Торханы, Пилешкасы. III группа (со среднерайонными показателями) – Мыслец, Кумашка. Рассмотрим администрации со сверхвысокими показателями заболеваемости АГ.

 

 

 

 

Из этих администраций за 2002 год максимальные значения заболеваемости АГ зарегистрированы в с. Б. Алгаши (ИП = 4,34). В этой же администрации в 2002 году зарегистрированы максимальные показатели за весь изучаемый период среди всех администраций (ИП = 4,34).

 

За опытный район взято село Русские Алгаши, т.к. в нем отмечается наибольшая заболеваемость ГБ (2,98%о) за 3 года наблюдения, а за контрольный – д. Юманаи (0,36%о), которая также имеет идентичную с опытным районом возрастно-половую и национальную структуру населения.

 

Распространенность ГБ быстро нарастает с возрастом: среди мужчин, также как у женщин максимальная заболеваемость АГ за изучаемый период приходится на возрастной интервал 50 и >, и минимальная заболеваемость приходится на 20–49лет. Во всех возрастных интервалах за изучаемый период заболеваемость АГ у женщин превышает заболеваемость у мужчин.

 

Вывод: заболеваемость гипертонической болезнью по деревням и селам Шумерлинского района распределена неравномерно: сверхвысокие показатели заболеваемости выявлены в селах Русские и Большие Алгаши, сверхнизкие – в Юманаях. Несмотря на неплохое оснащение Районной больницы, заболеваемость ГБ в Шумерлинском районе имеет тенденцию к росту. Максимальная заболеваемость зарегистрирована в 2002 году за весь изучаемый период (3 года). Заболеваемость ГБ в 2002г. увеличилась по сравнению с 2000 годом на 41%, с 2001 годом – на 11%. Заболеваемость ГБ преобладает у женщин в возрасте 50 лет и старше; в этих же возрастных пределах количество мужчин страдающих АГ увеличивается, хотя число больных женщин остается на высоком уровне.

 

 

Глава 4. Влияние биогеохимических факторов на заболеваемость ГБ

 

4.1 Сравнительная гигиеническая  оценка геологии, почвообразующих  пород, почв

 

Основными источниками загрязнения почвы являются твердые, жидкие промышленные отходы. По данным почвенного районирования, наибольший показатель первичной заболеваемости отмечается в зоне комплекса песчаных почв различной оподзоленности, наименьший – в зоне расположения оподзоленных черноземов среднегумусных и тучных в сочетании с сильновыщелоченными черноземами и темно-серыми лесными почвами.

 

4.1.1 Характеристика почв  Шумерлинского района ЧР

 

Шумерлинский район большей частью своей территории относится к Присурскому субрегиону биосферы. Большая часть этой территории лесная. Почвообразующими горными породами здесь служат аллювиальный, меловой и казанский ярусы пермской системы, обогащенные Na, Cl, S, Si, Ca, F, Br, I, Mn, Sr и обедненные K. Наиболее распространены здесь песчано-подзолистые почвы с участками Торфяно-болотистых и черноземных почв. Вследствие интенсивной разработки Алатырского, Анучинского, Атемарского и ряда других месторождений кремнистых диатомитов, вода в реке Сура в значительной степени обогащена растворенной кремнекислотой. Во всех звеньях биогеохимической пищевой цепи отмечен резкий избыток Si, Ca, F, умеренный недостаток I и Co, неблагоприятное, аномальное соотношение атомовитов. Отмеченные особенности способствуют нарушению натрий-калиевого баланса, фосфорно-кальциевого и белкового обменов, напряжению нейрогуморальных, гормональных механизмов регуляции гомеостаза в организмах практически здоровых жителей и СХЖ.