Автор работы: Пользователь скрыл имя, 08 Января 2013 в 15:27, курсовая работа
Цель настоящей работы – количественное определение флавоноидов и гидроксикоричных кислот в надземной части соссюреи спорной.
Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:
Определить оптимальные условия экстракции флавоноидов и фенолокислот из надземной части соссюреи спорной.
Разработать методики количественного определения флавоноидов и фенолокислот из растения.
Определить сумму флавоноидов и гидроксикоричных кислот в растении.
Введение 3
1. Разработка методики определения флавоноидов в надземной части соссюреи спорной 4
1.1. Определение оптимальных условий экстракции рутина из надземной части соссюреи спорной 6
1.1.1 Выбор оптимальной концентрации этанола 6
1.1.2. Определение оптимального соотношения сырье-экстрагент и кратности экстракции 6
1.1.3. Определение времени экстракции 7
1.1.4. Отработка условий проведения реакции 7
1.2. Определение содержания рутина в надземной части соссюреи спорной 8
1.3. Определение оптимальных условий экстракции гликозидов кверцетина в надземной части соссюреи спорной 10
1.3.1 Выбор оптимальной концентрации этанола 10
1.3.2 Отработка условий проведения гидролиза 10
1.3.3. Определение времени гидролиза 11
1.3.4. Отработка условий проведения реакции 12
1.4. Определение содержания гликозидов кверцетина в надземной части соссюреи спорной 13
2.Определение фенолокислот в надземной части соссюреи спорной. 14
2.1. Выбор оптимальной концентрации этанола 14
2.2. Определение содержания фенолокислот в надземной части 15
соссюреи спорной 15
Выводы 17
Список литературы 18
Для определения времени реакции в мерную колбу емкостью 25 мл помещали 5 мл (аликвота) раствора А, 5 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида, 0,3 мл концентрированной хлористоводородной кислоты и доводили 95% этанолом до метки. Оптическую плотность измеряли на спектрофотометре «СФ2000» при l 410 нм через 30, 45, 60, 90 и 120 мин. Результаты показали, что оптимальным является время реакции 60 мин.
Таким образом, для полного проведения реакции необходимо вносить 5 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида и 0,3 мл концентрированной хлористоводородной кислоты. Время проведения реакции 60 мин.
Определение рутина осуществляли по разработанной нижеизложенной методике.
Методика определения. Аналитическую пробу сырья массой 1,0 г (т.н.), измельченного до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2-3 мм помещают в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, экстрагируют 70% этанолом трижды по 45 мин на водяной бане при температуре 80 °С. Извлечения объединяют и фильтруют через бумажный фильтр («Красная лента») в мерную колбу вместимостью 100 мл, доводят 70% этанолом до метки (раствор А). 5 мл (аликвота) полученного раствора помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, добавляют 5 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида, 0,3 мл концентрированной хлористоводородной кислоты и доводят 95% этанолом до метки. Оптическую плотность измеряют на спектрофотометре при l 410 нм через 60 мин. Параллельно измеряют оптическую плотность раствора стандартного образца рутина. Для этого 1 мл 0,02% раствора рутина-стандарта помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, прибавляют 5 мл 5% раствора алюминия хлорида, 0,3 мл концентрированной хлористоводородной кислоты и доводят до метки 95% этанолом.
Приготовление раствора Государственного стандартного образца (ГСО) рутина: 0,0050 г (точная навеска) ГСО рутина, высушенного до постоянной массы при температуре 100-105 °С, растворяют в мерной колбе вместимостью 25 мл в небольшом количестве подогретого 95% спирта этилового и доводят объем раствора тем же спиртом до метки.
Расчет процентного содержания флавоноидов в пересчете на рутин осуществляют по формуле:
Х (%) = D · Mо · 100 · 25 · 1 · 100 · 100 = D · Mо · 8000 ,
Dо · М · 5 · 25 · 25 · (100-W) Dо · М · (100-W)
где D- оптическая плотность испытуемого раствора;
Dо- оптическая плотность ГСО рутина (среднее из трех измерений), равная 0,243;
Mо- масса ГСО рутина, г;
М- масса навески сырья, г;
W- влажность, %.
Результаты измерений
Таблица 6 – Содержания флавоноидов в экстракте из надземной части соссюреи спорной разного года сбора.
№ опыта |
Сырье 2008 г сбора Срок хранения 4 года |
Сырье 2009 г сбора Срок хранения 3 года |
Сырье 2010 г сбора Срок хранения 2 года | |||
Ā |
X |
A |
X |
A |
X | |
1 |
0,257 |
0,45 |
0,380 |
0,67 |
0,429 |
0,75 |
2 |
0,167 |
0,29 |
0,401 |
0,70 |
0,416 |
0,73 |
3 |
0,157 |
0,27 |
0,380 |
0,67 |
0,431 |
0,76 |
4 |
0,276 |
0,48 |
0,451 |
0,79 |
0,403 |
0,71 |
5 |
0,257 |
0,45 |
0,439 |
0,77 |
0,307 |
0,54 |
6 |
0,169 |
0,30 |
0,474 |
0,83 |
0,424 |
0,74 |
Ā / |
0,213 |
0,37±0,07 |
0,421 |
0,60±0,07 |
0,402 |
0,71±0,07 |
Параметры статистической обработки |
σ2= 0,000572; σ= 0,0756; σх=0,03087; Ip=0,07; А = 9,86 |
Для проведения исследования готовили три пробы: по 1,0 г сырья, измельченного до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм помещали в колбы со шлифом вместимостью 100 мл, экстрагировали этанолом различной концентрации (20, 40, 70 и 90% соответственно) трижды по 30 мин на водяной бане при температуре 80 °С. Извлечения объединяли и фильтровали через бумажный фильтр («Красная лента») в мерные колбы вместимостью 100 мл, доводили соответствующим этанолом до метки (раствор А). 20 мл раствора А помещали в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, добавляли 3% концентрированной хлористоводородной кислоты и нагревали на кипящей водяной бане с обратным холодильником в течениие 2 ч. 1 мл раствора прогидролизованного раствора А (аликвота) помещали в мерную колбу вместимостью 25 мл, добавляли 3 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида, доводили 95% этанолом до метки. Оптическую плотность измеряли на спектрофотометре «СФ2000» при l 430 нм через 50 мин. В соответствии с результатами измерений, оптимальной для извлечения флавонолгликозидов из надземной части соссюреи спорной является концентрация этанола 40% (табл. 7). Что согласуется с ранее проведенными исследованиями, указывающими на гидрофильный характер гликозидов кверцетина соссюреи спорной.
Таблица 7 – Зависимость оптической плотности в экстракте соссюреи спорной от концентрации этанола
Концентрация этанола, % |
Оптическая плотность |
Среднее значение | ||
20 |
0,194 |
0,174 |
0,210 |
0,192±0,054 |
40 |
0,366 |
0,375 |
0,304 |
0,348±0,058 |
70 |
0,223 |
0,224 |
0,260 |
0,236±0,032 |
Приготовление раствора А проводили по описанной выше методике. 20,0 мл раствора А помещали в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, добавляли 1% концентрированной хлористоводородной кислоты и нагревали на кипящей водяной бане с обратным холодильником в течение 2 ч. Аналогичным образом осуществляли гидролиз раствора А с добавлением 3, 5, 7 и 9% концентрированной хлористоводородной кислоты. В колбу вместимостью 25 мл помещали 1 мл (аликвота) прогидролизованного раствора А, добавляли 3 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида, доводили 95% этанолом до метки. Оптическую плотность измеряли на спектрофотометре «СФ2000» при l 430 нм через 60 мин (табл. 8). В соответствии с результатами измерений для проведения гидролиза оптимально добавлять 3% концентрированной хлористоводородной кислоты.
Таблица 8 – Зависимость величины оптической плотности от количества хлористоводородной кислоты, используемой при гидролизе этанольного извлечения соссюреи спорной
Количество конц. НСl в экстракте, % |
Оптическая плотность |
Среднее значение | ||
1 |
0,243 |
0,151 |
0,204 |
0,199±0,069 |
3 |
0,366 |
0,375 |
0,304 |
0,348±0,058 |
5 |
0,251 |
0,228 |
0,204 |
0,228±0,035 |
7 |
0,149 |
0,190 |
0,191 |
0,177±0,036 |
9 |
0,191 |
0,190 |
0,190 |
0,190±0,001 |
Для определения времени гидролиза 20,0 мл раствора А помещали в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, прибавляли 3% концентрированной хлористоводородной кислоты и нагревали на кипящей водяной бане с обратным холодильником в течение 30 мин. Аналогичным образом осуществляли гидролиз в течение 60, 90, 120 и 150 мин. В колбу вместимостью 25 мл помещали 1 мл (аликвота) прогидролизованного раствора А, добавляли 3 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида, доводили 95% этанолом до метки. Оптическую плотность измеряли на спектрофотометре «СФ2000» при l 430 нм через 60 мин. (табл. 9).
Таблица 9 – Зависимость величины оптической плотности от времени проведения гидролиза этанольного извлечения соссюреи спорной
Время проведения гидролиза, мин |
Оптическая плотность |
Среднее значение | ||
30 |
0,172 |
0,189 |
0,239 |
0,200±0,056 |
60 |
0,200 |
0,206 |
0,244 |
0,216±0,036 |
90 |
0,221 |
0,255 |
0,232 |
0,236±0,026 |
120 |
0,366 |
0,375 |
0,304 |
0,348±0,058 |
150 |
0,300 |
0,310 |
0,270 |
0,293±0,031 |
Исходя
из результатов эксперимента, гидролиз
проходит полностью при добавлении
3% концентрированной
Приготовление раствора А и его гидролиз осуществляли в соответствии с методикой указанной выше.
Для выбора количества добавляемого реактива в мерную колбу емкостью 25 мл помещали 1 мл (аликвота) прогидролизованного раствора А, 5% этанольный раствор алюминия хлорида в количестве 1, 2, 3, 4 и 5 мл, доводили 95% этанолом до метки. Оптическую плотность измеряли на спектрофотометре «СФ2000» при l 430 нм через 60 мин. (табл. 10).
Таблица 10 – Зависимость величины оптической плотности от количества 5% раствора алюминия хлорида
Количество 5% раствора алюминия хлорида, мл |
Оптическая плотность |
Среднее значение | ||
1 |
0,151 |
0,143 |
0,150 |
0,148±0,006 |
3 |
0,261 |
0,275 |
0,274 |
0,270±0,012 |
5 |
0,197 |
0,198 |
0,187 |
0,194±0,009 |
Для определения времени реакции в мерную колбу емкостью 25 мл помещали 1 мл (аликвота) прогидролизованного раствора А, 3 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида и доводили 95% этанолом до метки. Оптическую плотность измеряли на спектрофотометре «СФ2000» при l 430 нм через 10, 20, 30, 40, 45, 50, 60, и 70 мин (рис. 4).
Рис 4 Зависимость величины оптической плотности от времени проведения реакции.
Таким образом, для полного проведения реакции необходимо вносить 3 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида. Время проведения реакции 50 мин.
Определение содержания гликозидов кверцетина проводили по разработанной нижеизложенной методики.
Методика определения. Аналитическую пробу сырья массой 1,0 г (т.н.), измельченного до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2-3 мм помещают в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, экстрагируют 40% этанолом трижды по 45 мин на водяной бане при температуре 80 °С. Извлечения объединяют и фильтруют через бумажный фильтр («Красная лента») в мерную колбу вместимостью 100 мл, доводят 40% этанолом до метки (раствор А). 20 мл раствора А помещают в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, прибавляют 3% конц. хлористоводородной кислоты и нагревают на кипящей водяной бане с обратным холодильником в течение 120 мин. 1 мл (аликвота) полученного раствора помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, добавляют 3 мл 5% этанольного раствора алюминия хлорида и доводят 95% этанолом до метки. Оптическую плотность измеряют на спектрофотометре при l 425 нм через 50 мин. Параллельно измеряют оптическую плотность раствора стандартного образца кверцетина. Для этого 1 мл 0,02% раствора кверцетин-стандарта помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, прибавляют 3 мл 5% раствора алюминия хлорида и доводят до метки 95% этанолом.
Приготовление раствора Государственного стандартного образца (ГСО) кверцетина: 0,0050 г (точная навеска) ГСО кверцетина, высушенного до постоянной массы при температуре 100-105 °С, растворяют в мерной колбе вместимостью 25 мл в небольшом количестве подогретого 95% спирта этилового, прибавляют 1 каплю концентрированной хлористоводородной кислоты и доводят объем раствора тем же спиртом до метки.
Результаты измерений
Расчет процентного содержания флавоноидов в пересчете на кверцетин осуществляли по формуле:
Х (%) = D · Mо · 100 · 25 · 1 · 100 · 100 = D · Mо · 40000 ,
Dо · М · 1· 25 · 25 · (100-W) Dо · М · (100-W)
где D- оптическая плотность испытуемого раствора;