Біосинтез лікопіну

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 02 Июля 2013 в 08:17, курсовая работа

Описание работы

Робота присвячена виробництву органічного барвника лікопіну, продуцентом якого є гетероталічний мукоровий гриб Blakeslea trispora. Складається зі вступу, шести розділів, графічних матеріалів та списку використаної літератури з 38 найменувань. Загальний обсяг роботи - 77 сторінок, 1 креслення на 2-х аркушах формату А3, 8 рисунків та 6 таблиць.
У курсовій роботі подано обґрунтування вибору технології та сам технологічний процес. Він включає в себе допоміжні роботи та стадії вирощування посівного матеріалу, а також виробниче культивування.

Содержание работы

РЕФЕРАТ………………………………………………………………………….5
ВСТУП……………………………………………………………………………6
АНАЛІТИЧНИЙ ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ
РОЗДІЛ 1. Значення лікопіну у життєдіяльності людини………….…………..8
1.1 Значення лікопіну для рослин…………..………………………….8
1.2 Використання в аквакультурі………...…………………………….9
1.3 Механізм біологічної дії ………………………………………...10
1.4 Галузі застосування та потреба на ринку……………………..….10
1.5 Потреби в цільовому продукті біосинтезу нині та на перспективу………………………………………………………...13
РОЗДІЛ 2. Порівняльна характеристика методів одержання та промислових способів виробництва лікопіну…………………………………………………14
2.1 Шляхи синтезу цільового продукту……………………………….14
2.1.1 Добування лікопіну шляхом хімічного синтезу………….…14
2.1.2 Добування лікопіну шляхом екстракції з рослин…………...14
2.1.3 Мікробний синтез…………………………………………….15
2.2 Вплив основних факторів і параметрів на хід і результати технологічних процесів………………………………………………………....17
ТЕХНОЛОГІЧНА ЧАСТИНА РОБОТИ
Розділ 3. Характеристика цільового продукту біосинтезу – лікопіну………..19
3.1 Фармакологія лікопінових препаратів………………………20
Розділ 4. Обгрунтування вибору технологічної схеми……….……………….21
4.1 Обгрунтування вибору біологічного агента………………...………21
4.2 Обгрунтування вибору складу поживного середовища……………23
4.3 Розрахунок складу поживного середовища………………………....25
4.4 Обгрунтування способу проведення біосинтезу……………………30
4.5 Обгрунтування вибору ферментаційного обладнання……………..31
4.6Аналітичний огляд способів і методів реалізації мети виробництва……………………………………………………………………...35
Розділ 5. Характеристика біологічного агенту………………………………...39
5.1.Морфолого-культуральні ознаки……………………………….…....39
5.2 Фізіолого-біохімічні ознаки …………………………………………40
5.3.Таксономічний статус біологічного агента. ………………………..43
5.4.Особливості метаболізму біологічного агента……………………44
Розділ 6. Опис технологічного процесу біосинтезу лікопіну……………….46
6.1Розрахунок кількості стадій культивування…………………………46
6.2 Опис технологічного процесу біосинтезу…………………….……48
6.3 Контроль виробництва………………...……………………………..61
6.4 Методика визначення основних параметрів біосинтезу……….…. 68
6.4.1Визначення кількості лікопіну…………………………………....68
6.4.2Метод визначення азоту в середовищі…………….……………..68
6.4.3Метод визначення цукрів у середовищі…………...……………..69
6.4.4Метод визначення концентрації біомаси………..……………….70
6.4.5 Мікробіологічний контроль……………………………………….70
ВИСНОВКИ……………………………………………………………………..71
СПИСОК ВИКОРИСТАНОЇ ЛІТЕРАТУРИ…………………………………72
ДОДАТКИ………………………………………………………………………76

Файлы: 1 файл

ZMIST.docx

— 411.68 Кб (Скачать файл)

КН2РО4   0,5 г – 1000 мл

                     х –200 мл;                              х = (200•0,5) /1000 = 0,1 г

Тіамін: 0,002 г – 1000мл

                     х  – 200 мл;                            х = (200•0,002)/1000 = 0,0004 г

 

ДР 3.1.1 Приготування та стерилізація цукровмісних компонентів

Для приготування цукровмісних компонентів беруть наважку 18,8+9,4 = 28,2 г кукурудзяного борошна та 9,2+4,6 = 13,8 г соєвого борошна та подрібнюють  в роторно-пульсаційних апаратах. Отриману суміш переміщують у окрему ємність, та заливають 500 мл води. Ємність ставлять на вогонь та витримують 20 хв, періодично перемішуючи вміст. Після заварювання розчин розливають в 3 колби на 750 мл , тобто по 542/3 = 181 мл в кожну. Вимірюють рН та доводять значення до 6,2-6,8. Колби закривають пробкою та відправляють на стерилізацію в автоклав. Режим стерилізації: t = 120 0С, Р = 0,05 МПа, τ = 40 хв.

ДР 3.1.2 Приготування тав стерилізація розчину мінеральної  солі

Наважку 0,2+0,1 = 0,3 г КН2РО4 розчиняють у 57 мл дистильованої води. Розчин розливають у 3 колби на 100 мл ( по 19 мл в кожну), закривають пробками та відправляють на стерилізацію в автоклав. Стерилізація проходить за температури 131 0С, тиску 0,15МПа та триває 60 хвилин.

ДР 3.2 Підготовка поживного середовища для вирощування посівного матеріалу І генерації

На цьому етапі технологічного процесу готують 2 та 4 літри поживного середовища наступного складу, г/л:

Мальтозний сироп                      120;

Кукурудзяний екстракт              60;

 Хлібопекарські дріжджі (сухі)   0,5;

КН2РО4                                                                   0,5;

NaCl                                                3;

MnSО4 7H2О                               0,1;

Тіамін                                            0,002;

Загальний об’єм культуральної рідини  для (+) штаму становить 2л, тобто 1,8 л поживного середовища та 0,2 л інокуляту. Для приготування 1,8 літрів середовища потрібно, г:

Мальтозний сироп                      120•1,8 =216 мл;

Кукурудзяний екстракт              60•1,8 = 108 мл;

 Хлібопекарські дріжджі (сухі)   0,5•1,8 = 0,9 г;

КН2РО4                                                                   0,5•1,8 = 0,9 г;

NaCl                                                3•1,8 =5,4 г;

MnSО4 7H2О                               0,1•1,8 = 0,18 г;

Тіамін                                            0,002•1,8 = 0,004 г;

Загальний об’єм культуральної рідини  для (-) штаму становить 4л, тобто 3,6 л поживного середовища та 0,4 л інокуляту. Для приготування 3,6 літри середовища потрібно:

Мальтозний сироп                      120•3,6 =432 мл;

Кукурудзяний екстракт              60•3,6 = 216 мл;

 Хлібопекарські дріжджі (сухі)   0,5•3,6 = 1,8 г;

КН2РО4                                                                   0,5•3,6 = 1,8 г;

NaCl                                                3•3,6 =10,8 г;

MnSО4 7H2О                               0,1•3,6= 0,36 г;

Тіамін                                            0,002•3,6= 0,0072 г;

ДР 3.2.1 Приготування та стерилізація цукровмісних компонентів

Відміряють 216+432 = 648 мл мальтозного сиропу, 108+216 = 324 мл кукурудзяного екстракту та зважують 1,8+0,9 = 2,7 г сухих хлібопекарських дріжджів. Кукурудзяний екстракт нейтралізують за допомогою СаСО3. Змішують компоненти в окремі ємності та доливають 4 л води. Перемішують. Потім 4+0,648+0,324+0,0027 = 5 л розподіляють по колбах.

Кількість колб: 12+6 = 18, тобто  в кожну колбу потрібно внести 5/18 = 0,28 л , або 280 мл.Колби закривають пробками та відправляють на стерилізацію в автоклав. Режим стерилізації:  t = 112 0С, Р = 0,05 МПа, τ = 40 хв. Після стерилізації проводять мікробіологічний контроль.

ДР 3.2.2 Приготування та стерилізація розчину мінеральних солей

         Наважку солей: 1,8+0,9=2,7 г КН2РО4 , 5,4+10,8=16,2 г NaCl  та 0,18+0,36 = 0,54 г MnSО4 7H2О переносять у колбу. Додають 380 мл води, та за допомогою HCl доводять значення рН до 4,0. Потім отриманий розчин розливають у 18 колб, тобто по 380/18 = 21 мл в кожну. Закривають колби та стерилізують    за температури 131 0С, тиску 0,15МПа. Процес триває 60 хвилин. Після стерилізації рН доводять до 6,2 за допомогою NaOH. Проводять мікробіологічний контроль.

ДР 3.3 Підготовка поживного середовища для вирощування посівного матеріалу ІІ генерації

        Для посівного матеріалу ІІ генерації готують 40 та 20 л ітрів (-) та (+) штамів відповідно. Склад поживного середовища не змінюється.

Загальний об’єм культуральної рідини  для (+) штаму становить 20л, тобто 18 л поживного середовища та 2 л інокуляту

Для приготування 18 літрів середовища потрібно:

Мальтозний сироп                      120•18 =2,16 л;

Кукурудзяний екстракт              60•18 = 1,08 л;

 Хлібопекарські дріжджі (сухі)   0,5•18 = 9 г;

КН2РО4                                                                   0,5•18 = 9 г;

NaCl                                                3•18 = 54 г;

MnSО4 7H2О                               0,1•18 = 1,8 г;

Тіамін                                            0,002•18 = 0,036 г;

Загальний об’єм культуральної рідини  для (-) штаму становить 40л, тобто 36 л поживного середовища та 4 л інокуляту

Для приготування 36 літрів середовища потрібно:

Мальтозний сироп                      120•36 =4,32 л;

Кукурудзяний екстракт              60•36 = 2,16 л;

 Хлібопекарські дріжджі (сухі)   0,5•36 = 18 г;

КН2РО4                                                                   0,5•36 = 18 г;

NaCl                                                3•36 =108 г;

MnSО4 7H2О                               0,1•36= 3,6 г;

Тіамін                                            0,002•36= 0,072 г;

Для приготування 60 літрів посівного  матеріалу потрібно: 60-6-6 = 48 л води. 6 л – кількість інокуляту; 6 л – конденсат під час стерилізації. З них 16 л потрібно для приготування поживного середовища, на якому росте (+) штам, та 32 л для (-) штаму.

ДР 3.3.1Приготування та стерилізація цукровмісних компонентів

      Відміряють 2,2 л мальтозного сиропу, 1,1 л кукурудзяного екстракту та зважують 9 г сухих хлібопекарських дріжджів. Кукурудзяний екстракт нейтралізують за допомогою СаСО3. Змішують компоненти в окремі ємності з мішалкою та охолоджувальною сорочкою і доливають 9 л води. Доводять рН до 6,2 та стерилізують гострою парою при увімкненій мішалці. Цукровмісні компоненти для вирощування (-) штаму готують так: відміряють 4,3 л мальтозного сиропу, 2,2 л кукурудзяного екстракту та зважують 18 г хлібопекарських дріжджів. Кукурудзяний екстракт нейтралізують за допомогою СаСО3. Змішують компоненти в окремі ємності з мішалкою та охолоджувальною сорочкою і доливають 17 л води. Доводять рН до 6,2 та стерилізують гострою парою при увімкненій мішалці.

 Режим стерилізації:  t = 112 0С, Р = 0,05 МПа, τ = 40 хв. Після стерилізації проводять мікробіологічний контроль.

ДР 3.3.2 Приготування та стерилізація розчину мінеральних солей

Солі для (+) штаму: наважку солей: 9 г КН2РО4 , 54 г NaCl  та 1,8 г MnSО4 7H2О  переносять у посівний апарат об’ємом 32 л. Додають 16-6-2,2-1,1-0,1 = 6,6 л води, та за допомогою HCl доводять значення рН до 4,0.

Солі для (-) штаму: 18 г КН2РО4 , 108 г NaCl  та 3,6 г MnSО4 7H2О  переносять у посівний апарат об’ємом 63 л. Додають 32-17-4,3-2,2-0,18 = 8,5 л води, та за допомогою HCl доводять значення рН до 4,0.

Стерилізують гострою парою   за температури 131 0С, тиску 0,15МПа. Процес триває 60 хвилин. Після стерилізації рН доводять до 6,2 за допомогою NaOH.

ДР 3.4 Підготовка поживного середовища для виробничого  культивування.

Для виробничого культивування  готують 600 – 60 = 540 літрів поживного середовища, де 60 це кількість інокуляту. Кількісний вміст компонентів становить:

Мальтозний сироп                      120•540 =64,8 л;

Кукурудзяний екстракт              60•540= 32 л;

Хлібопекарські дріжджі (сухі)   0,5•540 = 270 г;

КН2РО4                                                                   0,5•540 = 270 г;

NaCl                                                3•540 =1,62 кг;

MnSО4 7H2О                               0,1•540= 54 г;

Тіамін                                            0,002•540= 1,08 г;

Соєва  олія                                      24 л

Кількість води, яку потрібно додати: 540 – 60 = 480 л, 60 – конденсат.

ДР 3.4.1Приготування та стерилізація цукровмісних компонентів

          Відміряють 64,8 л мальтозного сиропу,  32 л кукурудзяного екстракту та зважують 270 г сухих хлібопекарських дріжджів. Кукурудзяний екстракт нейтралізують за допомогою СаСО3. Змішують компоненти у збірнику з мішалкою та охолоджувальною сорочкою та доливають 250 л води. Доводять рН до 6,2 та стерилізують гострою парою при увімкненій мішалці. Режим стерилізації:  t = 112 0С, Р = 0,05 МПа, τ = 40 хв. Після стерилізації проводять мікробіологічний контроль.

ДР 3.4.2 Приготування та стерилізація розчину мінеральних солей

         Наважку солей: 270 г КН2РО4 , 1,62 кг NaCl  та  = 54 г MnSО4 7H2О  переносять у виробничий ферментер.  Додають 133 л води. За допомогою HCl доводять значення рН до 4,0. Стерилізують    за температури 131 0С, тиску 0,15МПа. Процес триває 60 хвилин. Після стерилізації рН доводять до 6,2 за допомогою NaOH.

ДР 3.4.3 Стерилізаціясоєвої олії.

Соєву олію стерилізують у окремому апараті за температури 131 0С, тиску 0,15МПа. Процес триває 60 хвилин.

ДР 3.5 Приготування та стерилізація піногасника

В якості піногасника використовують хімічну речовину Basildon. Її стерилізують за температури 131 0С, тиску 0,15МПа. Процес триває 60 хвилин.

ТП 4 Підготовка інокуляту та посівного  матеріалу.

            ТП 4.1 Ведення музейної культури. Музейні культури штаму (-) та (+) штамів зберігають на агаризованому середовищі. Для отримання посівного матеріалу повітряний міцелій та спори вимивали з поверхні агару стерильною водопровідною водою. Отриманими суспензіями засівали колби.

ТП 4.2 Вирощування  посівного матеріалу в колбах.

ТП 4.1.1. Вирощування (-) штаму. Компоненти поживного середовища для культивування в колбах на качалках надходять від ДР 3.1.1, ДР 3.1.2 та ДР 3.1. Перед введенням музейної культури в колбу зі стерильними цукровмісними компонентами вносять простерилізований розчин солі, та охолоджують до температури культивування. До отриманого поживного середовища додають тіамін. Зі скошеного агару висівають музейну культуру (-) штаму продуцента. Вирощування триває 48 годин. Температура процесу – 25-27 0С, кількість обертів ротаційного шейкера – 250 об/хв. Через кожні 8 годин проводять мікробіологічний контроль на наявність сторонньої мікрофлори, якої не повинно бути в середовищі. Після завершення процесу визначають вміст біомаси в середовищі.

ТП 4.1.2. Вирощування (+) штаму. Компоненти поживного середовища для культивування в колбах на качалках надходять від ДР 3.1.1, ДР 3.1.2 та ДР 3.1. Перед введенням музейної культури в колби зі стерильними цукровмісними компонентами вносять простерилізований розчин солі, та охолоджують до температури культивування. До отриманого поживного середовища додають тіамін. Зі скошеного агару висівають музейну культуру (+) штаму продуцента. Вирощування триває 48 годин. Температура процесу – 25-27 0С, кількість обертів ротаційного шейкера – 250 об/хв. Через кожні 8 годин проводять мікробіологічний контроль на наявність сторонньої мікрофлори. Наявність сторонньої мікрофлори не допускається.

ТП 4.3 Вирощування посівного матеріалу І генерації

ТП 4.2.1 Вирощування (-) штаму. Компоненти поживного середовища надходять від  ДР 3.2.1 та  ДР 3.2.2; тіамін з ДР 3.2.  В колби до стерильних цукровмісних компонентів через палаючий факел вносять стерильні розчини солей, додають тіамін та охолоджують до температури культивування. Посівний матеріал надходить із ТП 4.2.1. Вирощування триває 48 годин. Температура процесу становить 27 0С, кількість обертів ротаційного шейкера – 250 об/хв. Через кожні 8 годин проводять мікробіологічний контроль на наявність сторонньої мікрофлори. Після завершення процесу визначають вміст біомаси.

ТП 4.2.2 Вирощування (+) штаму. Компоненти поживного середовища надходять з  ДР 3.2.1 та ДР 3.2.2; тіамін з ДР 3.2. В колби до стерильних цукровмічних компонентів через палаючий факел вносять стерильні розчини солей, додають тіамін та охолоджують до температури культивування.   Посівний матеріал надходить із ТП 4.2.2. Вирощування триває 48 годин. Температура процесу становить 27 0С, кількість обертів ротаційного шейкера – 250 об/хв. Під час процесу кожні 8 годин відбирають проби та проводять мікробіологічний контроль на наявність сторонньої мікрофлори. Після завершення процесу визначають концентрацію біомаси.

Информация о работе Біосинтез лікопіну