Автор работы: Пользователь скрыл имя, 14 Июня 2013 в 18:56, реферат
Для измерения оптической плотности или светопропускания жидких растворов по отношению к растворителю или стандартному раствору предназначен фотоэлектрический колориметр (ФЭК).
В основу работы этого прибора положен принцип уравнения интенсивности двух световых пучков, проходящих через оптические среды, при помощи переменной щелевой диафрагмы.
Активность каталазы выражается каталазным числом, которое представляет собой количество перекиси водорода в миллиграммах, разложенной 1 мл3 крови за 30 минут. Показателем каталазы называют соотношение каталазного числа к количеству миллионов эритроцитов в 1 мкл исследуемой крови.
Ход работы. С помощью микропипетки берут кровь из пальца человека или хвоста/уха экспериментального животного и готовят гемолизат крови, разводя ее в 1000 раз в мерной колбе (0,1 мл в 100 мл дистиллированной воды).
В 2 колбочки или широкие пробирки отмерить по 7 мл дистиллированной воды и по 2 мл 1% раствора пероксида водорода. В опытную колбу/пробирку прилить 1 мл разведенной в 1000 раз крови. Обе колбы/пробирки – опытную и контрольную – оставить на 30 минут при комнатной температуре. По истечении указанного времени в обе пробы добавить по 3 мл 10 % раствора серной кислоты, которая прекращает действие каталазы. Содержимое опытной и контрольной проб оттитровать 0,1 н раствором перманганата калия до слабо-розового цвета.
Расчет. Допустим, что на титрование опытной пробы пошло 4,5 мл 0,1 н раствора КМnО4, а контрольной – 12,6 мл 0,1 н раствора КМnО4. 0,1 н раствора КМnО4 соответствует 1 мл 0,1 н Н2О2, а 1 мл Н2О2 соответствует 1,7 мг Н2О2. Следовательно, в данном случае каталазное число соответствует: (12,6 – 4,5) × 1,7 = 13,77 единиц.
Показатели нормы. Каталазное число крови у людей колеблется в пределах от 11 до 20 единиц. В клинике чаще используется показатель каталазы, который в норме составляет 2-3×10-6.
Клинико-диагностическое значение. Высокая активность каталазы наблюдается при пернициозной и макроцитарной анемии, а также при введении в организм кофеина, ацетоновых тел, алкоголя. Активность каталазы в крови снижается при ряде заболеваний: раке, анемии, туберкулезе и др
16. Количественное
определение содержания
Определение содержания гемоглобина в крови цианметгемоглобиновым методом по Драбкину.
Принцип метода. Гемоглобин окисляют в метгемоглобин (гемиглобин) железосинеродистым калием (красная кровяная соль), образующийся с ацетонциангидрином окрашенный цианметгемоглобин (гемиглобинцианид) определяют колометрически.
Ход работы. В пробирку (опыт) (осторожно!) отмерить 5 мл. трансформирующего раствора (реактив Драпкина), к нему добавить 0,02 мл крови (разведена в 251 раз). В другую пробирку (стандарт) прилить 5 мл реактива Драпкина и 0,02 мл стандартного раствора. Содержимое обеих пробирок перемешать и в течение 30 минут выдержать при комнатной температуре. Измерить экстинцию опытной и стандартной проб на ФЭКэ при длине волны 500-560 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 1 см против холостой пробы (трансформирующий раствор).
Расчет содержания гемоглобина произвести по формуле:
Hb(г/л)=Еоп/Ест ×С × К × 0,01, где
Еоп – экстинкция опытной пробы;
Ест – экстинкция стандартного раствора;
С – концентрация гемиглобинцианида в стандартном растворе (59,75 мг/100мл);
К – коэффициент разведения крови (251);
0,01 – коэффициент пересчета мг/100 мл в г/л.
Сопоставить с нормой содержания у здоровых людей и сделать вывод.
У здоровых людей концентрация гемоглобина колеблется в следующих пределах:
- новорожденные – 210 – 225 г/л;
- дети в возрасте 1 месяца – 145 - 165 г/л;
- дети в возрасте 6 месяцев – 115 - 130 г/л;
- дети в возрасте 1 года – 110 - 120 г/л;
- дети в возрасте 14-15 лет – 130 -150г/л;
- взрослые женщины – 120 - 140 г/л, мужчины – 135 - 160г/л.
Клинико-диагностическое значение определения содержания гемоглобина в крови: снижение содержания гемоглобина в крови наблюдается при анемиях различного генеза, при острых и хронических кровотечениях, некоторых инфекционных заболеваниях; повышение – при сгущении крови, при заболеваниях, связанных с увеличением количества эритроцитов (эритремии) и др.
17. Количественное
определение билирубина в сыворотке
крови по методу Иендрашека.
Количественное определение билирубина в сыворотке крови по методу Иендрашека.
Принцип метода. В основе метода Иендрашека лежит реакция Ван ден Берга, описавшего способность билирубина давать розово-фиолетовое окрашивание с диазореактивом Эрлиха. Интенсивность образующейся окраски прямо пропорциональна концентрации билирубина в растворе. Разрушение билирубин-альбуминового комплекса (свободный, или непрямой билирубин) осуществляется кофеиновым реактивом, который одновременно переводит билирубин в растворимое диссоциированное состояние. Интенсивность образующейся окраски измеряется на ФЭКе при зеленом светофильтре (563 нм), а количество билирубина определяется по калибровочному графику.
Ход работы. В 3 пробирки отмерить указанные в таблице реактивы и колориметрировать через 5 - 10 мин. на ФЭКе в кювете 10 мм против контроля при зеленом светофильтре.
По калибровочному графику определить содержание общего и связанного билирубина. Вычитая из уровня общего билирубина количество прямого, рассчитать содержание непрямого (свободного) билирубина. Сопоставить с нормой содержания у здоровых людей и сделать вывод.
Реактивы |
Пробирки | ||
1-я |
2-я |
3-я | |
Сыворотка крови |
1 мл |
1 мл |
1 мл |
Кофеиновый реактив |
3,5 мл |
3,5 мл |
- |
Диазореактив |
0,5 мл |
- |
0,5 мл |
Физиологический раствор |
- |
0,5 мл |
3,5 мл |
Типы билирубина |
общий |
контроль |
прямой (связанный) |
Нормальное содержание билирубина в крови – 8,5 – 20,5 мкмоль/л; 75% общего билирубина составляет непрямой (свободный), 25% - прямой (связанный) билирубин.
Клинико-диагностическое
значение определения содержания билирубина
в сыворотке крови: определение общего билирубина и его
фракций используется для диагностики
и дифференциальной диагностики желтух
различной этиологии – гемолитической
(надпеченочной), паренхиматозной (гепатоцеллюлярной,
печеночной) и обтурационной (механической,
подпеченочной). При гемолитической желтухе
гипербилирубинемия развивается в основном
за счет непрямого (свободного) билирубина.
При паренхиматозной желтухе происходит
деструкция гепатоцитов и нарушается
экскреция прямого билирубина в желчные
ходы, он попадает в кровь. Кроме того из-за
функциональной несостоятельности гепатоциты
не способны эффективно захватывать из
крови непрямой билирубин и конъюгировать
его. При паренхиматзной желтухе наблюдается
гипербилирубинемия смешанного типа.
При обтурационной желтухе нарушается
эвакуация желчи в двенадцатиперстную
кишку, что приводит к повышению в крови
прямого, а в более поздние сроки болезни
и непрямого билирубина.
18. Пробы
коллоидной устойчивости плазмы крови
Вельтмана и тимоловая
Пробы коллоидоустойчивости белков сыворотки крови.
А. Тимоловая проба
Принцип метода. Метод основан на образовании плохо растворимого глобулино-тимололипидного комплекса при взаимодействии сыворотки крови с тимоло-вероналовым буфером.
Ход работы. К 6 мл тимоло-вероналового буфера (рН 7,6) прибавить 0,1 мл негемолизированной сыворотки крови и через 30 минут отколориметрировать при красном светофильтре в кюветах толщиной 10 мл против тимоло-вероналового буфера. Расчет произвести по калибровочному графику.
В норме интенсивность помутнения колеблется в пределах от 0 до 4 условных единиц.
Б. Проба Вельтмана
Принцип метода. Метод основан на нарушении коллоидоустойчивости белков сыворотки крови в присутствии раствора хлористого кальция при нагревании.
Ход работы. К 0,1 мл негемолизированной сыворотки крови прилить 4,9 мл воды, перемешать и нагреть над пламенем спиртовки до однократного закипания пробы. Охладить смесь и посмотреть ее содержимое на свет. Если в пробирке нет единичных хлопьев коагулированного белка, добавить еще 0,1 мл 0,5% раствора хлористого кальция и вновь прокипятить. Процедуру повторять до тех пор, пока не выпадут хлопья.
В норме коагуляции наступает при добавлении 0,4 - 0,5 мл раствора хлористого кальция.
Клинико-диагностическое. Осадочные пробы широко распространены в клинической практике. Данная группа проб основана на исследовании изменений коллоидной устойчивости белков сыворотки крови при патологических состояниях, сопровождающихся диспротеинемией (воспалительные заболевания, заболевания печени и почек и др.). Лабильность сывороточных белков, определяемая в первую очередь соотношением крупно- и мелкодисперсных фракций (альбумины/глобулины) и снижением коллоидоустойчивости при действии различных денатурирующих агентов, может быть связана с относительным увеличением глобулинов при уменьшении альбуминов. Большое значение имеет и относительное увеличение γ-глобулинов в глобулиновой фракции.