Автор работы: Пользователь скрыл имя, 17 Мая 2012 в 18:38, дипломная работа
Углеводы - один из основных компонентов клеток и тканей живых организмов, обеспечивают все живые клетки энергией (глюкоза и ее запасные формы - крахмал, гликоген), участвуют в защитных реакциях организма (иммунитет). Из пищевых продуктов наиболее богаты углеводами овощи, фрукты, мучные изделия (крупы, овощи, фрукты и бобовые). Пища человека состоит примерно на 70 % из углеводов. Углеводы входят в состав лекарственных препаратов (гепарин, сердечные гликозиды, некоторые антибиотики). Повышенное содержание некоторых углеводов в крови и моче служит важным диагностическим признаком отдельных заболеваний (сахарный диабет). Суточная потребность человека в углеводах составляет 400-450 г.
Введение 4
1 Литературный обзор 6
1.1 Свойства углеводов 6
1.2 Методы анализа и разделения углеводов 9
1.2.1 Гель-хроматография 9
1.2.2 Распределительная хроматография на ионообменных смолах 21
1.2.3 Хроматография на бумаге 28
1.2.4 Газожидкостная хроматография триметилсилильных
производных сахаров 29
1.2.5 Газожидкостная хроматография метиллированых сахаров 29
2 Экспериментальная часть 32
3 Безопасность жизнедеятельности 54
Заключение 60
Cписок используемых источников 61
В качестве жёстких гелей обычно применяются пористый силикагель (порасил), пористые стёкла с контролируемым размером пор и аэросилогели- синтетические макропористые кремнеземы с жёсткой пористой структурой и однородным размером пор. Аэросилогели отличаются высокой степенью химической чистоты и отсутствием каталитического воздействия на хроматографируемые вещества.
Большое значение имеют сорбенты на основе пористого стекла с привитыми углеводами. Они сочетают гидрофильный характер поверхности с высокой механической прочностью и предназначаются для разделения методом гель - хроматографии смесей высокомолекулярных соединений в водных растворах.
При выборе растворителя, главное требование к растворителям, применяемым в гель-хроматографии, заключается в способности его растворять все исследуемые соединения смеси, смачивать поверхность его зёрен. При анализе поливиниловых спиртов в качестве подвижной фазы часто используют тетрагидрофуран, при анализе полиэлектролитов- воду .
Для мягких гелей растворитель должен способствовать их набуханию. В идеальном случае растворитель, заполняющий поры геля и пространство между зёрнами геля, должен одинаково взаимодействовать с молекулами хроматографируемых веществ. Тогда перемещение растворённых веществ в поры происходит только за счёт диффузии.
Не маловажное значение имеет вязкость растворителя, с которой связана скорость массообмена. Особенно низкой должна быть вязкость растворителя для растворов высокомолекулярных соединений, обладающих малым значением коэффициента диффузии.
Выбор растворителя в гель-хроматографии зависит также от применяемой системы детектирования. Если детектором служит дифференциальный рефрактометр, целесообразно в качестве растворителей применять толуол, трихлорбензол, м-крезол, т.е. вещества с высоким показателем преломления. При использовании ультрафиолетового детектора эти растворители непригодны, их заменяют хлороформом или четырёххлористым углеродом.
Роль солей, присутствующих в анализируемом растворе, также приходится учитывать, так как некоторые полимерные вещества могут изменять размеры своих молекул при наличии в растворе электролитов. Кроме того, электролит может оказывать влияние на набухаемость мягких гелей и изменять размеры их пор.
Наиболее часто применяемыми в гель-хроматографии растворителями наряду с водой являются N,N′-диметилформамид, хлороформ, четырёххлористый углерод, 1,1,2,2-тетрахлорэтан, толуол, 1,2,4-трихлорбензол, м-крезол, тетрагидрофуран и др. [13].
Для детектирования могут использоваться детекторы различных типов, применяемые в жидкостной хроматографии - рефрактометрические, фотометрические (в УФ- или ИК-области) и др., сигнал которых пропорционален концентрации растворённого вещества.
Специфическим типом детекторов для анализа высокомолекулярных соединений являются вискозиметры. Они измеряют вязкость протекающего через них элюента. В присутствии высокомолекулярных веществ вязкость раствора возрастает, что регистрируется на хроматограмме в форме пика .
В гель хроматографии все возможные значения удерживаемых объёмов укладываются в точно определённый интервал между V0 и V0+Vр, где V0 –мёртвый объём колонки ,(объём межзёрного пространства), Vр –суммарный объём пор. Поэтому данный метод характеризуется небольшими временами удерживания, определяемыми значениями коэффициента распределения К. Пики на гель - хроматограммах обычно достаточно узкие и хорошо воспроизводимые. Ввиду, того что вещество не претерпевает в ходе хроматографического процесса никаких химических взаимодействий, она выходит из колонки в неизменном виде и без потерь. Поэтому гель-хроматографию можно использовать и в препаративных целях. С другой стороны, и вещество не оказывает никакого взаимодействия на колонку, что нередко наблюдается в других видах хроматографии[14].
1.2.2 Распределительная хроматография на ионообменных смолах
Впервые разделение углеводов методом распределительной хроматографии на ионообменных смолах в смесях растворителей различной полярности было описано в 1952 г. В последние годы метод был значительно усовершенствован. В качестве элюента при разделении сахаров и их производных наиболее пригоден водный спирт, и далее речь будет идти только об этом элюенте.
Одним из основных факторов, обусловливающих сорбцию сахаров точно так же, как и других полярных неэлектролитов в данном виде хроматографии, является неодинаковое распределение компонентов элюирующей смеси между смолой и внешним раствором. В случае водного спирта относительное количество воды в неподвижной фазе выше, чем в подвижной, и этим объясняется тот факт, что смолой преимущественно удерживаются полярные вещества. На состав подвижной и неподвижной фаз существенное влияние оказывает также взаимодействие смола - растворитель и смола - растворенное вещество. При смене противоиона порядок элюирования некоторых сахаров может измениться.
Коэффициенты распределения веществ возрастают с увеличением концентрации спирта и уменьшаются с повышением температуры. За редким исключением, коэффициенты распределения растут с увеличением числа гидроксильных групп в молекуле. Введение в молекулу неполярных групп, например метильных, приводит к уменьшению коэффициента распределения. Величина последнего зависит также от положения заместителей.
В таблице 1 приведены коэффициенты распределения ряда свободных сахаров.
Распределительная хроматография на ионообменных смолах была с успехом применена для разделения моно- и олигосахаридов, альдитов и производных сахаров, не содержащих ионогенных группировок, например гликозидов и частично метилированных сахаров. Этот метод можно использовать как в аналитических, так и в препаративных целях.
Таблица 1 - Коэффициенты объемного распределения (Dv) некоторых моносахаридов и ангидросахаров при различных температурах и концентрациях спирта
Сахара | Пористая смола (SO42-) 75 °С | Смола малой емкости (SO42-) 75 °С | Дауэкс (SO42-) 90°С | Дауэкс (Li+) 75 °С | Амберлит IR-120 (Li+) | ||
75 °С | 100 °С | ||||||
|
| ||||||
| 88 | 86 | 90 | 86 | 92,4 | 92,4 | |
Эритроза | 3,08 |
|
|
| 1,9 |
|
|
Треоза | 3,84 |
|
|
| 1,4 |
|
|
Рибоза | 6,55 | 4,06 | 5,80 | 4,98 |
| 4,0 | 3,1 |
Арабиноза | 10,1 | 6,26 | 9,79 | 7,56 |
| 3,8 | 3,0 |
Ксилоза | 12,5 | 7,38 | 12,1 | 9,19 | 2,7 | 3,0 | 2,4 |
Фруктоза | 13,5 | 8,04 | 13,8 | 10,3 |
| 5,6 | 4,3 |
Сорбоза |
| 8,93 | 15,6 | 11,0 |
| 4,6 | 3,7 |
Манноза | 16,4 | 9,37 | 16,9 | 11,8 |
| 5,3 | 4,4 |
Галактоза | 23,4 | 13,0 | 24,4 | 16,1 | 5 7 | 6,8 | 5,3 |
Глюкоза | 28,1 | 14,9 | 29,5 | 19,5 | 4 8 | 5,4 | 4,4 |
Альтроза | 16,6 |
|
|
| 4 2 |
|
|
Рамноза | 4,75 | 2,80 | 4,11 | 3,54 |
| 1.4 | 1,2 |
Фукоза |
| 3,25 | 4,96 | 4,19 |
| 2,4 | 1,8 |
На рисунке 6 приведена принципиальная схема прибора, используемого для разделения сахаров. Элюент (спирт — вода) помещают в колбу Мариотта и обезгаживают кипячением, чтобы предотвратить появление пузырьков воздуха в колонке. За колбой расположена открытая градуированная трубка, обычно заполненная элюентом. Скорость движения элюента в системе регулируют, перекрывая выходное отверстие колбы. Элюент подается в колонку поршневым насосом из нержавеющей стали который помещают ниже остальных аппаратов системы элюирования..
Рисунок 6 - Аппаратура для проведения хроматографического разделения и автоматического анализа сахаров
Давление измеряют манометром Бурдона, снабжённым прерывателем. Последний отключает насос и нагреватель, если давление в системе превышает норму (80 атм) и также если оно падает из-за утечки жидкости. Анализ можно проводить на колонках, имеющих пористое дно и тефлоновое уплотнение на верхнем конце колонки. Если работа ведется при высоком давлении, не рекомендуется пользоваться колонками со стеклянными фланцами. Вместо них можно использовать стеклянные трубки с приклеенными эпоксидной смолой муфтами из поливинилхлорида [15].
Чтобы в колонке поддерживалась требуемая температура (70-90 °С), по рубашке колонки циркулирует вода из термостата. Повышение температуры колонки приводит к сужению зон вымываемых веществ и снижению рабочего давления.
Смолы, применяемые в распределительной хроматографии, представляют собой сильноосновные аниониты или сильнокислые катиониты, основу которых составляет сополимер стирола и дивинилбензол. В аналитических колонках, диаметр которых равен 2—6 мм, а скорости элюирования высокие, рекомендуется использовать мелкозернистые смолы с размером частиц 8—13 или 10—15 мкм. Для препаративнго разделения сахаров на широких колонках (диаметр 12—25 мм) и при меньшей скорости элюирования можно применять более грубые смолы.
Колонку промывают элюентом до тех пор, пока не образуется однородный слой ионита. После этого растворитель, находящийся над слоем смолы, отсасывают, в колонку переносят новую порцию суспензии и операцию повторяют. Перед хроматографическим разделением заполненную колонку приводят в состояние равновесия с элюентом данного состава, промывая ее элюентом не менее 16 ч.
Анализирующая система. Определение сахаров и их различных производных в элюате удобно проводить автоматически орциновым методом. Раствор реагентов хранят в бутыли из темного стекла, откуда он и подается в систему при помощи поршневого насоса. Между насосом и тройником, в котором происходит смешение элюата с раствором красителя, расположено устройство для гашения (демпфирования) пульсаций давления (рисунок 1). Смесь элюата с раствором красителя пропускают через змеевик длиной 20 м и диаметром 1,2 мм, погруженный в термостатируемую полигликолевую баню (100°С). Время нахождения смеси в змеевике около 10 мин. Интенсивность окраски раствора определяется спектрофотометрически при 420 нм проточных кюветах с l 2—15 мм. Удобно пользоваться системой из двух последовательно соединенных кювет разной длины: если на более длинной кювете самописец «зашкаливает», измерения проводят на более короткой кювете. На колонке диаметром 4 мм удается разделить и проанализировать от 2 до 20 мкг веществ. На колонках меньшего или большего диаметра можно проанализировать соответственно меньшее или большее количество смеси.
Достоинством вышеописанной схемы анализа является высокая точность количественного определения и отсутствие необходимости в частом построении калибровочных кривых (при постоянстве условий анализа). Если удается достичь полного разделения компонентов, отклонение от среднего значения в двух аналогичных анализах составляет менее 1%. Однако весь элюат расходуется за одно определение, и потому не удается провести дополнительное исследование фракций.
Если проводится препаративное разделение или если проводимые исследования требуют повторного разделения и дополнительных анализов компонентов смеси, то для разделения потока элюата и введения растворов реагентов следует использовать перистальтический насос. Такая схема анализа (рисунок 6) отличается большей гибкостью, однако недостатком ее является более низкая точность количественных определений в связи с тем, что соединительные трубки насоса быстро изнашиваются и их приходится менять через 14 дней.
М- сместители; Р1 и Р2 – гасители пульсации; L – флуоресцентная лампа трубки; А – орционный канал: 16-ти % водный раствор орциона, 60% серная кислота; В – периодат-формальгидный канал
Рисунок 7 - Двухканальный анализатор для одновременного определения восстанавливающих сахаров и альдитов
На рисунке 7 приведена схема анализа с применением перистальтического насоса. Элюат делится на три потока и одновременно анализируется орциновым (А) и периодат-формальдегидным (В) методами. Третий поток подается на коллектор фракций или отбрасывается. В элюате дополнительно определяют содержание восстанавливающих сахаров периодатным или феррицианидным методом. Выделенные ациклические альдиты анализируются автоматически периодат-формальдегидным методом. В кислой среде они окисляются периодатом с образованием формальдегида, который определяют до реакции с пентандионом-2,4 в растворе ацетата аммония. Избыток периодата предварительно восстанавливают арсенитом. В условиях анализа при окислении большинства альдитов образуется с высоким выходом формальдегид, в то время как при окислении большей части альдоз формальдегид образуется лишь в незначительных, с трудом детектируемых количествах. Исключение составляет D-фруктоза, ее можно достаточно точно определить этим методом. Периодат-формальдегидегидный метод в совокупности с орциновым используется для анализа сложных смесей сахаров и альдитов. Точность его сравнима с точностью орцинового метода [16].
1.2.3 Хроматография на бумаге
В последнее время хроматографию на бумаге все чаще начинают использовать в качестве самостоятельного количественного метода. При этом весьма широкое распространение получает количественная хроматография углеводов: моно-, ди- и олигосахаридов, а также продуктов гидролиза крахмала, целлюлозы и других полимеров. Количественное определение индивидуальных веществ, разделяемых на хроматограммах, производится различными способами. Существует ряд методов, при помощи которых можно определить концентрацию разделенных веществ непосредственно на бумаге. Это методы: визуальное сравнение (полуколичественный), измерение площади пятен, измерение интенсивности окраски пятен, определение максимальной плотности окраски пятен. В случае работы с радиоактивными веществами можно легко установить активность этих соединений при помощи счетчика Гейгера — Мюллера.