Автор работы: Пользователь скрыл имя, 25 Декабря 2013 в 17:48, курсовая работа
Цель работы: проект экспертизы природного сырья, проведение фармакопейного и химического исследования березового гриба (чаги).
Задачи исследования: литературный анализ химического состава и биологической активности березового гриба (чаги):
1. обзор основных классов химических соединений содержащихся в березовом грибе (чаги);
2. установление фармакопейных показателей (зольность, влажность, экстрактивные вещества, хромогенный комплекс);
3. изучение химического состава березового гриба (чаги);
4. проект экспертизы природного сырья березового гриба (чаги).
Таблица 2.10 – Хроматографический анализ осадка №5
№ пятна |
Система 1 |
№ пятна |
Система 2 | ||||||
Rf пятна |
Видимый свет |
УФ |
ФМК |
Rf пятна |
Видимый свет |
УФ |
ФМК | ||
1 |
0.79 |
- |
гол |
син |
1 |
0.85 |
- |
гол |
син |
а
Рисунок 2.9 – Осадок № 5 в различных системах растворителей:
а – хроматограмма в системе 1;
б – хроматограмма в системе 2.
В результате хроматографического анализа видим, что осадок № 5 является индивидуальным веществом, в УФ - свете флюоресцирует голубым цветом. Предполагаем, что осадок № 5 является фенолокислотой.
Осадок № 5 представляет собой белые кристаллы, с Тплав=210-212 °С, растворимые в этаноле (Рисунок 2.10).
Рисунок 2.10 – Кристалл осадка № 5
Хроматографический анализ осадка № 5 в выше приведенных системах (№ 4 и 5) также потверждают индивидуальность соединения.
Пятно в системе 4 имеет Rf=0.93 (Рисунок 2.11,а), в системе 5 имеет Rf=0.30 (Рисунок 2.11,б).
а
Рисунок 2.11 – Хроматограммы осадка № 5 в различных системах растворителей:
а – Осадок № 5 в системе растворителей 4;
б – Осадок № 5 в системе растворителей 5.
Для проявления хроматограмм использовали следующие качественные
реакции на фенолокислоты [28]:
Реакция азосочетания, приводящая к образованию окрашенных соединений с диазотированным п-нитроанилином: 25 мл 0,3 % раствора п-нитроанилина в 8 % НCl смешиваем непосредственно перед употреблением с 1,5 мл 5 % водного раствора NaNO2 и полученной смесью обрабатываем хроматограммы. Через несколько минут хроматограмму дополнительно опрыскивают 20 % водным раствором Na2CO3.
По литературным данным известно, что п-оксибензойная кислота дает
бледно-желтую окраску, переходящую в розовую после опрыскивания раствором карбоната натрия.
Ванилиновая кислота дает желтую окраску, переходящую в фиолетовую, протокатеховая и галловая – желтую окраску, переходящую соответственно в серовато-синию и светло-коричневую, п-кумаровая – желтую
окраску, переходящую в синию.
Осадок № 5 дает желтую окраску, переходящую в синию. Исходя их этого предполагаем п-кумаровую кислоту.
Образование комплекса с 1% раствором железоаммониевых квасцов
FeNH4(SO4)2 ·12H2O в воде [16].
Фенолы, имеющие орто- диоксигруппы, окрашиваются в зеленый, а три рядовые оксигруппы в синий цвет.
Осадок № 5 с раствором железоаммониевых квасцов не изменяет свою окраску, что подтверждает наличие лишь одной фенольной группы.
При вычислении Rf кислот и сравнение с литературными данными было доказано наличие п-кумаровой кислоты (Таблица 2.11).
Таблица 2.11 – Хроматографический анализ фенолокислот в различных
системах растворителей
№ |
Кислоты |
Rf фенолокислот (литературные данные) |
Качественные реакции фенолокис | ||||
Система 4 |
Система 5 |
УФ |
ДзПНА |
ЖАК | |||
1 |
п-окибензойная |
0.87 |
0.28 |
- |
роз. |
- | |
2 |
ванилиновая |
0.89 |
0.40 |
- |
фиолет. |
- | |
3 |
протокатеховая |
0.83 |
0.05 |
тем |
сер-син |
зел. | |
4 |
галловая |
0.60 |
0.00 |
т.ф |
св-кор |
син. | |
5 |
п-кумаровая |
0.93 |
0.30 |
син |
син |
- | |
Результаты исследуемого осадка №5 | |||||||
1 |
Осадок №5 |
0.93 |
0.30 |
син. |
син. |
- |
Таким образом, осадок №5 идентифицирован как фенолокислота - п-кумаровая (Рисунок 2.12).
Данная кислота была выделена как индивидуальное вещество (Рисунок 2.10). Были определены физико-химические параметры (Тплав=210-212°С, что соответствует литературным данным п-кумаровой кислоты).
Рисунок 2.12 – п-кумаровая кислота
ИК-спектр ν см-1 (таблетка КВr): 3395 см-1 (валентные колебания ОН-группы); 2930 см-1 (углеродный скелет ароматического кольца); 1700 см-1 (валентные колебания С=О в карбонильной группе); 1650 см-1 (парадизамещенные в бензойное кольцо); 1450 см-1 (колебания ОН-группы в кислотах); 1390 см-1 (колебания ОН-группы в фенолах); 1040 см-1 (колебания
СН-связи).
Физические характеристики подтверждают предположения о том, что осадок № 5 представлен в виде п-кумаровой кислоты (Рисунок А.1).
Таким образом, в гексановой фракции выделена и идентифицирована п-кумаровая кислота, содержание, которой от воздушно-сухого сырья составляет 0.02 %. Кроме того, идентифицироаны терпеновые соединения, а именно бетулиновая кислота, бетулин и лупеол.
Исследование надосадочной жидкости гексанового экстракта
Полученный гексановый экстракт упариваем, получаем раствор слабо-желтого цвета. Раствор сушим при нормальных условиях, получаем белый осадок с желтым маслообразным вкраплением, которое отмываем петролейным
эфиром. Петролейный экстракт упариваем, получаем желтую маслообразную
жидкость с массой 0.02г [25].
Хроматографирование полученной маслообразной жидкости в системе растворителей гексан – диэтиловый эфир – ледяная уксусная кислота (73:25:2), характерная для анализа липидов.
На хроматограмме наблюдаем наличие размытого, характерного для высших жирных кислот, пятна с Rf от 0.46 до 0.58, с голубым свечением. Из этого можно сделать вывод о наличии высших жирных кислот в маслообразной жидкости из гексанового экстракта.
После того как отделили белый осадок от желтой маслянистой жидкости, проводим хроматографический анализ осадка. Осадок растворяем в этиловом спирте, хроматографируем в системе растворителей: хлороформ – бензол – этилацетат (4:8:1). Полученную хроматограмму просматриваем в видимом и УФ-свете, проявляем ФМК.
При хроматографическом анализе осадка выделены пять пятен. Распределение пятен в различных системах растворителей показано в таблице 2.12.
Таблица 2.12 – Хроматографический анализ осадка гексанового
экстракта
№ пятна |
Rf пятна |
Проявитель | |||||
Видимый свет |
УФ |
Пары NH3 |
5% спирт. р-р AlCl3 |
5% водн. р-р Na2CO3 |
ФМК | ||
1 |
0.00 |
жел |
жел |
жел |
жел |
жел |
син |
2 |
0.20 |
св-жел |
св-жел |
яр. жел |
жел |
св-жел |
син |
3 |
0.40 |
- |
- |
- |
- |
- |
син |
4 |
0.57 |
- |
- |
- |
- |
- |
син |
5 |
0.73 |
- |
гол |
- |
гол |
гол |
син |
Исходя из полученных данных можно предположить, что в осадке обнаружена фенолокислота, так как пятое пятно флюоресцирует голубым свечением, а при опрыскивании ФМК проявляется синим цветом. Два пятна можно отнести к терпеновым соединениям. Идентификацию проводили при “свидетелях” – бетулине и лупеоле, которые являются основными терпеноидами бересты березы. Третье и четвертое пятна оказались идентичны бетулину (Rf=0.40) и лупеолу (Rf=0.57) соответственно. Второе пятно представлено в виде флавоноида, а именно флавонолы. Для подтверждения проводили качественные реакции на флавоноиды, для этого использовали пары аммиака (NH3), 5 % водный раствор соды (Na2CO3), 5 % спиртовый раствор хлорида алюминия (AlCl3). При проведении цветных реакций выявили соответствие второго пятна флавонолу, так как реакция на 5 % спиртовый раствор хлорида алюминия дает желтое окрашивание, 5 % водный раствор соды давал светло-желтое окрашивание, а пары аммиака – ярко-желтое окрашивание. Первое пятно не идентифицировано.
В результате хроматографического анализа надосадочной жидкости можно сделать вывод о том, что в надосадочной жидкости находятся фенолокислоты, терпеновые соединения (бетулин, лупеол) и флавоноиды (флавонолы).
2.3.2 Исследование толуольного экстракта
Экстракцию чаги проводим по схеме (Рисунок 2.8) в аппарате Сокслета (Рисунок 2.6) при температуре 111°С (Ткип растворителя). Полученный экстракт упариваем до 10мл. Полученный после экстракции раствор (экстракт) изучаем с помощью ТСХ. Для этого на пластинки “Silufol” наносим анализируемый экстракт. Путем предварительного подбора выявляем наиболее подходящие системы растворителей:
эфир (30:5:5:5:10);
Первая система часто применяется для терпеновых соединений, которая хорошо показала разделение фенолокислот и терпеновых соединений, а вторая
система хорошо разделяет малополярные соединения.
Полученные хроматограммы высуш
Хроматографирование в первой системе дало наибольшее разделение веществ (6 пятен). В обеих системах наблюдаем флюоресценцию голубым цветом, пятна с Rf1=0.84 и Rf2=0.77, которые при опрыскивании ФМК окрашиваются в синий цвет, что предполагает наличие фенолокислот. Пятна 2, 3 и 4 с Rf1=0.22; Rf2=0.47; Rf3=0.63 соответственно, не флюоресцируют в УФ-свете, а с ФМК дают синее окрашивание, что дает основание отнести эти вещества к терпеноидам. Их идентификацию проводили при “свидетелях” – бетулиновой кислоте, бетулине и лупеоле, которые являются основными терпеноидами бересты березы. Пятна 2, 3 и 4 оказались идентичны бетулиновой кислоте (Rf=0.22), бетулину (Rf=0.47) и лупеолу (Rf=0.63) соответственно.
Таблица 2.13 - Хроматографический анализ толуольного экстракта
№ пят-на |
Rf пят-на |
Система 1 |
Rf пят-на |
Система 2 | |||||||
Вид. свет |
УФ |
ФМК |
Вид. свет |
УФ |
NH3 |
5% вод. р-р Na2CO3 |
5% спирт. р-р AlCl3 |
ФМК | |||
1 |
0.00 |
св. жел |
жел |
син |
0.23 |
св. жел |
тем |
жел |
жел |
св. жел |
син |
2 |
0.22 |
- |
- |
син |
0.30 |
св. жел |
тем |
жел |
жел |
жел-зел |
син |
3 |
0.47 |
- |
- |
син |
0.40 |
св. жел |
гол |
- |
- |
- |
- |
4 |
0.63 |
- |
- |
син |
0.77 |
- |
гол |
- |
- |
- |
син |
5 |
0.66 |
- |
гол |
- |
|||||||
6 |
0.84 |
- |
гол |
син |
Информация о работе Общая характеристика березового гриба (чаги) и его химического состава